Les utilisations de l’astaxanthine en Aquaculture

l’astaxanthine is A Aanaturally occurring red carotenoid pigment found primarily danscrustaceans (e.g., crabs, crayfish, lobsters Et en pluskrill), salmon, Et en plusother marine life Et en plusmicroorganisms, including microalgae [1–3]. Fish, like other animals, lack Le conseil des ministresability À propos desynthesize astaxanthdansde novo Et en plusmust obtain it À partir defood. Wild fish obtain astaxanthin from prey, while farmed fish obtain it from feed. Natural astaxanthin hEn tant queanti-inflammatory, antioxidant, coloring, immunity-enhancing, anti-atherosclerotic, anti-aging Et en plusother effects, Et en plusis widely used in the functional food, dietary supplement, beverage, cosmetics Et en plushealth care industries [4-6].

Au cours des dernières années, l’astaxanthine a nSur leseulement été utilisée dans les produits de santé humaine, mais aussi comme additif alimentaire dans l’élevage animAl., et al.L’utilisatiSur lede l’astaxanthine en aquaCulture Et etculturepeut améliorer l’immunité des animaux, réduire la mortalité et réduire l’abus d’antibiotiques [7]. De plus, l’astaxanthine joue un rôle clé dans la La pigmentationde certains animaux aquatiques, comme la truite arc-en-ciel et les poissons d’ornement [8]. Cet article passe en revue les sources, les propriétés physiques et chimiques et les applications de l’astaxanthine en aquaculture.

1 Sources d’astaxanthine

Les principauxsources De laastaxanthin are simple microorganisms, especially algae, yeasts, fungi and bacteria. Astaxanthin cannot be synthesized biochemically Par:animals, but can accumulate in animal tissues Par:eating organisms containing astaxanthin. Natural astaxanthin extracts usually contain other types De lacaroténoïdes (β-carotene, canthaxanthin and lutein) that are associated with biological activity. Different microorganisms and marine animals, including microalgae, yeast, the muscles De lawild and farmed salmon, trout, krill and crayfish, complex plants, and some birds are natural sources De laastaxanthin. Commercial astaxanthin is usually chemically synthesized or produced by Xanthophyllomyces dendrorhous or hématocoquePluvialis [9-11]. The astaxanthin content in wild salmon meat is 3–38 mg·kg-1, while the astaxanthin content in rainbow trout meat is 12–25 mg·kg-1 [12]. Therefore, fillets from wild and farmed salmon can be used as a dietary source De laastaxanthin.

Poussés par la demande du marché et les avantages écologiques, la La productiond’astaxanthine à partir de microalgues et l’application pratique de l’astaxanthine en aquaculture sont devenus des points névroses de la recherche au cours des dernières années. Les chercheurs ont étudié l’isolement de souches de microalgues riches en astaxanthine et le mécanisme par lequel les cellules d’algues synthétisent l’astaxanthine. Actuellement, Haematococcus pluvialis, Chlorella zofingiensis et Scenedesmus obliquus ont été identifiés comme des souches d’algues ayant le potentiel de produire de l’astaxanthine naturelle (voir tableau 1). L’astaxanthine ou microalgues riches en astaxanthine ont été largement utilisés comme additifs alimentaires pour le saumon, les crevettes et les poissons ornementales pour améliorer l’immunité des animaux, prévenir l’abus d’antibiotiques et augmenter la pigmentation. L’utilisation de l’astaxanthine algale pour l’élevage du poisson a été considérée comme un moyen viable d’atteindre un développement durable dans l’industrie aquacole.

2 propriétés physiques et chimiques de l’astaxanthine

L’astaxanthine est un caroténoïde de formule moléculaire C40H52O4 (masse moléculaire relative 596,84), densité 1,071 g·mL-1, point de fusion 216 °C et point d’ébullition 774 °C. L’astaxanthine a une faible solubilité dans l’eau et est facilement soluble dans les solvants organiques. Sa solubilité dans le dichlorométhane, le chloroforme, le diméthyl sulfoxide et l’acétone est de 30 mg·mL-1, 10 mg·mL-1, 0,5 mg·mL-1 et 0,2 mg·mL-1, respectivement [20].

La structure moléculaire de l’astaxanthine est illustrée à la Figure 1A. Il est composé d’une double liaison conjuguée au milieu composé de quatre unités d’isoprène, et d’une structure d’anneau hexamérique α-hydroxycanthaxanthine aux deux extrémités. C-3 et C-3 ' Avoir des centres chiraux. Comme un centre chiral peut avoir deux conformations, les deux atomes de carbone chiraux C-3 et C-3' De l’astaxanthine peut exister sous la forme R Rou S,ainsi l’astaxanthine a trois isomères: (3S, 3S'), (3R, 3R') et (3R, 3S') (voir Figures 1B~D), où (3S, 3L Llet#39;) et (3R, 3R ') sont des énantiomères, chaque paire d’énantiomères ayant une rotation optique opposée, ce qui fait tourner la lumière polarisée plane vers la gauche ou la droite, tandis que la (3R, 3S ') l’isomère n’a pas de rotation optique.

L’astaxanthine existe dans deux états: libre et estérifiée. L’astaxanthine synthétique est principalement à l’état libre (3S, 3R'), whileAstaxanthine naturelle is mainly in the esterified state (3S, 3S') et (3R, 3R'). L’astaxanthine produite par Rhodopseudomonas palustris est principalement le cis (3R, 3R') diester [21], et l’astaxanthine contenue dans Haematococcus Pluvialis:est principalement le all-trans (3S, 3S') monoester [22]. En tant que membre de la famille des caroténoïdes liposolubles, la structure spéciale de l’astaxanthine peut entraîner les inconvénients suivants dans l’application:

(1) hydrophobicité. L’astaxanthine est une substance huileuse avec une faible solubilité dans les solvants non polaires. L’astaxanthine a deux groupes hydroxyle à chaque extrémité, et chaque groupe hydroxyle peut interagir avec un acide gras pour former un ester. L’astaxanthine estérifiée est plus hydrophobe que l’astaxanthine libre [23].

(2) instabilité: en raison de la structure de la double liaison conjuguée non saturée, les monomères de l’astaxanthine sont extrêmement instables. Pendant le traitement et le stockage, ils sont sujets à la dégradation et à la décoloration en raison de changements dans la lumière, la température et la teneur en oxygène, ce qui les fait perdre leur activité biologique d’origine et résulte en mauvaise qualité et couleur du produit final.

3 Application de l’astaxanthine en aquaculture

For a long time, astaxanthin has been added À propos defish feed as a natural pigment for the cultivation of salmon, bream and some ornamental fish. In recent years, more and more studies have found that astaxanthin has a Positif positifeffect on the weight gain and immunitaireresponse of aquatic animals, and the application of astaxanthin has been expanded to crustaceans and some economic fish species. Carotenoids are closely related to a large number of physiological functions in plants and animals. The color of most aquatic animals and animal tissues is attributed to the presence of various carotenoids [24-25]. As the main carotenoid in aquatic animal tissues, astaxanthin has the functions of pigmentation, anti-oxidation and anti-stress.

3.1 effet de l’astaxanthine sur la fonction colorante des animaux aquatiques

La Pigmentation est un processus important dans l’élevage du saumon, de la truite, de la dorade, des poissons ornementaux et des crustacés, et les consommateurs préfèrent le saumon rose à forte teneur en astaxanthine. De plus, la valeur marchande des poissons ornementaux dépend en partie de la couleur de leur peau ou de leur couleur musculaire. La couleur des animaux aquatiques joue un rôle important dans l’acceptation par les consommateurs, la qualité perçue et le prix. Les crustacés d’élevage à coquille jaune clair ont généralement un prix de marché inférieur à ceux à coquille rouge ou orange foncé. Dans la plupart des cas, les poissons ne peuvent synthétiser les pigments dans leur corps, mais ils peuvent absorber les pigments exogènes. Par conséquent, l’ajout d’astaxanthine à la nourriture peut améliorer la capacité de coloration des poissons et des crustacés et la concentration d’astaxanthine dans leurs tissus [26-27].

Salmon, trout and sea bream are widely distributed in the Pacific and Atlantic Oceans, and are rich in protein, lipids,Pigments naturels and minerals, as well as other essential nutrients for the human body. In the market, the pigmentation in the skin and muscles of salmon, trout and sea bream to a certain extent determines their quality. However, in the wild, the decline of fishery resources has severely limited the market supply of these hautevalue-added fish. In order to provide humans with high-quality aquatic products, the aquaculture of salmon, trout and sea bream has developed rapidly, increasing the market demand for fish feed.

Sigurgisladottir Et al.[28] [traduction]ont ajouté 88,6 mg·kg-1 d’astaxanthine à l’alimentation du saumon atlantique. Les résultats ont montré que la teneur en astaxanthine dans le musclesdu saumon du groupe expérimental était de 2, 0~ 2,5 μg·kg-1, tandis que le groupe témoin avait une teneur de 0,5 ~ 0,8 μg·kg-1, ce qui indique que l’ajout d’astaxanthine augmentait la pigmentation dans le muscle du saumon. Dans l’élevage de la truite arc-en-ciel, la teneur en astaxanthine dans l’alimentation des poissons a augmenté de 0 à 27,6 mg·kg-1, ce qui a entraîné une augmentation de la teneur totale en caroténoïdes et de la valeur du chroma musculaire dans les muscles. Avec une teneur en astaxanthine de 27,6 mg·kg-1 à 46,1 mg·kg-1, il n’y a pas eu d’augmentation significative de la teneur totale en caroténoïdes et de la valeur de chroma [29]. La raison principale de ce phénomène peut être que l’astaxanthine excessive ne peut pas être entièrement absorbée par les animaux aquatiques.

Zhang Chunyan et al. [30] ont ajouté 1,0 g·kg-1 d’astaxanthine synthétique (groupe Ast) et 4,4 g·kg-1 d’extrait d’haematococcus pluvialis (groupe HE, teneur en astaxanthine de 100 mg·kg-1) à l’alimentation de la truite arc-en-ciel, et le groupe témoin était l’alimentation de base. Après une alimentation de 6 semaines, on a constaté que la rougeur musculaire et le jaune étaient significativement plus élevés que ceux du groupe témoin. A. Kurnia et al. [31] [en]ont montré que la teneur en astaxanthine dans les tissus de daurade nourrie avec de l’astaxanthine synthétique et naturelle atteignait 7,76 mg·kg-1 et 12,7 mg·kg-1, respectivement. C. Georges et al. [32] [traduction]nourris de truites arc-en-ciel avec de l’astaxanthine synthétique (groupe AST) et de l’astaxanthine naturelle dérivée d’haematococcus pluvialis (groupe ALG), les résultats ont montré que les concentrations d’astaxanthine dans le plasma et les muscles, la saturation des couleurs musculaires (C*), la rougeur (a*) et le jaunissement (b*) de la truite arc-en-ciel du groupe AST étaient plus élevées que celles du groupe ALG,ce qui indique que l’astaxanthine provenant de sources différentes a des effets différents sur la pigmentation de différents animaux aquatiques.

Jiang J. F. et al. [33] [traduction]ont ajouté de l’astaxanthine de différentes sources et concentrations (20, 50, 75 et 100 mg·kg-1) à l’alimentation des fraises de la mer rouge (Pseudochromis fridma⁃ nii) et ont mené un essai d’alimentation de 42 jours pour étudier l’effet de l’astaxanthine sur la coloration des fraises de la mer rouge. Les résultats ont démontré que la luminosité des poissons des groupes ayant reçu 75 mg·kg-1 et 100 mg·kg-1 d’astaxanthine naturelle et 100 mg·kg-1 d’astaxanthine synthétique était significativement inférieure à celle du groupe témoin, que la saturation de la couleur de la peau était significativement plus élevée que celle du groupe témoin, et que la teinte de tous les groupes (à l’exception du groupe 25 mg·kg-1 d’astaxanthine naturelle) était significativement différente de celle du groupe témoin.

N. A. Bell et al. [34] [traduction]ont ajouté de la poudre de homard riche en astaxanthine et en protéines à la nourriture des poissons rouges (Carassius auratus) et ont constaté que la luminosité, la rougeur et le jaunissement des poissons rouges augmentaient. Wang Junhui et al. [35] ont étudié l’effet de différents niveaux d’addition d’astaxanthine sur la couleur du corps de la carpe koi (Cyprinus carpio L.), et ont constaté que l’ajout d’astaxanthine n’avait aucun effet sur la luminosité de la couleur du corps, et que la rougeur (a*) et le jaunissement (b*) de la couleur du corps avaient tendance à augmenter d’abord, puis à diminuer avec l’augmentation de l’astaxanthine en plus. En plus d’affecter la pigmentation des poissons d’ornement, l’ajout d’astaxanthine à la nourriture peut également affecter le comportement à base de couleur des poissons d’ornement. E. Lewis et al. [36] [traduction]ont constaté que l’ajout d’astaxanthine à l’alimentation des poissons roses rouges (Puntius titteya) peut réduire leur comportement d’attaque miroir et leur comportement de sélection de compagnon.

De nombreuses espèces de crustacés comme le crabe ermites, le crabe roi rouge, les écrevisses, les homards griffés, les homards épineux et les crevettes vertébrales perdront ou ne développeront pas de pigmentation si elles ne consomment pas suffisamment de caroténoïdes [37-41]. Il a été démontré que la Pigmentation chez les crevettes bananières était héréditaire [42], ce qui suggère qu’il pourrait y avoir une base génétique pour la rétention des pigments caroténoïdes. Long X. W. et al. [43] [traduction]ont constaté que lorsque des crabes chinois adultes (Eriocheir sinensis) étaient nourris avec une alimentation contenant de la poudre d’haematococcus pluvialis riche en astaxanthine naturelle, la rougeur (a*) des ovaires et des coquillages des crabes chinois augmentait de façon significative avec l’augmentation de la quantité de poudre d’haematococcus pluvialis dans l’alimentation, tandis que la luminosité (L*) et le jaunissement (b*) montraient une tendance à la baisse. Ce résultat est conforme à l’ajout de poudre d’haematococcus pluvialis au régime alimentaire, la rougeur (a*) des ovaires et des carapaces du crabe à mitaines chinois a augmenté significativement, tandis que la luminosité (L*) et la jaunesse (b*) ont montré une tendance à la baisse. Ce résultat est conforme aux résultats de recherche de Han T. et al. [44] [traduction]sur le crabe nageant (Portunus (en anglais)trituberculatus).

3.2 effet de l’astaxanthine sur la fonction antioxydante des animaux aquatiques

Reactive oxygen species (ROS) are a natural product of aerobic metabolism in living organisms and are a type of free radical necessary for survival. Reactive oxygen species play an important role in regulating certain cellular activities, apoptosis, the immune system, gene transcription, etc., but they are highly harmful to cells. To deal with the constantly generated reactive oxygen species, the body relies on an antioxidant defence system that includes both enzymatic and non-enzymatic antioxidants. Enzymatic antioxidants include peroxidase (POX), superoxide dismutase (SOD) and catalase (CAT); non-enzymatic antioxidants include vitamin E, vitamin C,trace elements and carotenoids. ROS is highly reactive towards lipids, proteins and nucleotides. The reaction of ROS with polyunsaturated fatty acids (PUFA) leads to lipidesperoxidation. This reaction produces a new ROS, which continues to react with new PUFA, leading to a cycle of oxydatifreactions. Aquatic animals are rich in n-3 PUFA and are extremely vulnerable to attacks by oxygen and other free radicals.

Ces dernières années, l’astaxanthine, un antioxydant efficace trouvé dans certains organismes marins, a attiré l’attention de plus en plus des chercheurs [45-46]. Parce que l’astaxanthine contient des liaisons doubles conjuguées, des groupes hydroxyle et des groupes céto dans sa structure moléculaire, il peut réagir avec les radicaux libres d’oxygène pour récupérer les radicaux libres et exercer un effet antioxydant. Il a été démontré que l’astaxanthine a une forte activité antioxydante, 10 fois celle des caroténoïdes (comme la canthaxanthine, le β-carotène et la lutéine), 65 fois celle de la vitamine C et 100 fois celle de la vitamine E [47]. L’activité antioxydante de l’astaxanthine se manifeste par sa capacité à récupérer l’oxygène singlet, le superoxyde et les radicaux hydroxyles, ainsi que d’autres espèces réactives d’oxygène (ROS), des espèces réactives d’azote (RNS) et à inhiber la peroxydation lipidique [48]. L’astaxanthine réagit avec la graisse pour former des esters d’astaxanthine, qui peuvent effectivement inhiber la réaction chimique entre les radicaux libres d’oxygène intracellulaire et les acides gras insaturés, réduisant ainsi les dommages oxydatifs à l’adn et aux réponses inflammatoires, améliorant le corps et#La présente invention concerne une réponse immunitaire et pénètre facilement les membranes biologiques de manière à minimiser les dommages à la membrane, protégeant ainsi la membrane et les acides gras de la peroxydation lipidique.

O. Z. Barim et al. [49] [traduction]added vitamin E (VE), vitamin C (VC), vitamin A (VA), astaxanthin (AST) and β-carotene (βC) to the diet of Danube crayfish (Astacus leptodactylus). During the experiment, The number and size of eggs were measured during the experiment, and the contents of VE, VC, VA, AST, βC and malondialdehyde (MDA) in the tissues were determined. The results showed that the number and size of eggs in the VE and AST groups were the best in each group. In the AST group, the MDA content in the liver, ovary, gill and muscle tissues was the lowest, indicating that the astaxanthin group had the résistancewas the highest. Yi X. et al. [50] [traduction]showed that adding astaxanthin to the diet of yellow croaker could increase the activity of SOD Dand GSH-Px in the yellow croaker liver, thereby increasing the overall antioxidant level of the yellow croaker body.

P. 1 et 2.1 et 2. Ma S. L. et al. [51] [traduction]ont étudié l’effet de l’ajout d’astaxanthine au régime alimentaire de Hali otus discus hannai) ajouté au régime alimentaire d’astaxanthine sur sa capacité antioxydante et ont constaté que, comparativement au groupe témoin, le groupe astaxanthine de Haliotis discus hannai contenant du gazon sérique et du chat augmentait de façon significative, tandis que la teneur en MDA diminuait de façon significative. Le gazon et le chat reflètent le corps et#39; S capacité à compenser les radicaux libres, et plus la teneur est élevée, plus la capacité antioxydante est élevée.

3.3 effet de l’astaxanthine sur la résistance au Le stresset aux maladies des animaux aquatiques

Les exploitations aquacoles à haute densité exposent souvent les animaux à divers stress physiques. Ces stress proviennent de facteurs tels que le tri, le transport, la manipulation, la vaccination et l’entassement, qui font que les animaux sont dans un état de stress élevé et d’immunosuppression, ce qui peut perturber l’équilibre dynamique entre les animaux aquatiques et leur environnement, déclenchant ainsi une réponse au stress. Un stress excessif entraîne un dysfonctionnement physiologique, une diminution du taux de croissance, une immunosuppression, une sensibilité à l’invasion de maladies et même la mort chez les animaux aquatiques [52-53]. Par conséquent, il est important d’atténuer les conditions défavorables causées par le stress dans la recherche en aquaculture.

An early study showed that a daily intake of a diet containing 230–810 mg·kg-1 of astaxanthin for 4 weeks could improve the tolerance of Penaeusmonodonto a high salt environment [54] [traduction]. Y. H. Chien et al. [55] [traduction]noted that a diet complétéwith 360 mg·kg-1 astaxanthin for 1 week could induce tolerance to low dissolved oxygen levels in P. monodonlarvae. After being tested with different stress factors, Penaeus monodon nourrian astaxanthin-containing diet (80 mg·kg-1) for 8 weeks showed higher antioxidant defense capacity (lower SOD levels) and better liver function (lower AST and ALT), as well as improved résistanceto hyperosmotic and thermal stress.

De même, lorsqu’il a reçu un régime contenant 71,5 mg·kg-1 d’astaxanthine pendant 8 semaines, Penaeus monodon a montré un statut antioxydant étonnant et une résistance au stress ammoniacal à différents niveaux (0,02, 0,2, 2,20 mg·L-1) [56].

Lower SOD, AST and ALT indicate that various antioxidant enzymes in the tissues of P. monodon are consumed after biological Le stress,améliorerCapacité antioxydanteand liver function. The above studies show that astaxanthin is a very important nutrient for P. vannamei under physiological stress caused by external pressure. K. Supamattaya et al. [57] [traduction]nourriP. vannamei with a feed containing 200–300 mg·kg-1 of Dunaliella salina extract, could tolerate low oxygen environments of 0.8–1 mg·L-1 and significantly resist viral blancspotsymptômes de complications(WSSV). It was also found that the tissue of Penaeus monodon fed with Dunaliella salina extract had a higher astaxanthin content, indicating that they could quickly convert β-carotene into astaxanthin.

Des résultats similaires ont été observés dans un grand nombre d’études sur Litopenaeus vannamei et d’autres crustacés. Zhang J. et al. [58] [traduction]ont constaté que Litopenaeus vannamei (avec un supplément alimentaire de 125 à 150 mg·kg -1 d’astaxanthine, en plus de faire augmenter les niveaux d’expression du facteur hypoxique inducible (HIF-1α), de la superoxyde dismutase de manganèse cytosolique (cMnSOD) et de l’adn du chat, augmentait également la capacité antioxydante totale et la tolérance au stress hypoxique (0,8 mg·L-1). Dans une étude connconnée, Niu J. et al. [59] [traduction]ont démontré que l’alimentation d’un régime combiné d’astaxanthine (100 mg·kg-1) et de cholestérol (1%) augmentait l’expression du gène de l’arnm du facteur HIF-1α et de la protéine de choc thermique HSP70 chez la crevette Vanamei, ce qui a amélioré sa tolérance au cours d’un transport In vivo simulé de 36 heures.

Wang H. et al. [60] [traduction]ont également constaté qu’après avoir reçu 80 mg·kg-1 d’astaxanthine pendant 4 semaines, Penaeus vannamei présentait une résistance élevée au Virus:du syndrome des taches blanches (WSSV), qui était liée à l’amélioration des indicateurs immunitaires de l’hémolymphe tels que l’activité phagocytique, le nombre total de globules sanguins, l’activité phénoloxidase sérique, l’activité radicale antisuperoxyde sérique, l’activité lysozyme sérique et l’activité antibactérienne sérique. Après 10 semaines de régime alimentaire contenant différentes doses d’astaxanthine (50-150 mg·kg-1), la crevette japonaise (Macrobrachium nipponense) peut tolérer divers stress physiques et chimiques, tels que l’apport anoxique (0,5 mg·L-1), le stress ammoniacal (0,75 mg·L-1) et le stress au froid (0 ℃) [61]. Jiang X. D. et al. [62] [traduction]ont ajouté de 30 à 120 mg·kg-1   De la poudre d’haematococcus pluvialis, et a constaté que par rapport au groupe témoin (sans ajout de poudre d’haematococcus pluvialis), la mortalité de chaque groupe ajouté était considérablement réduite en cas de stress ammoniacal. Il a également été constaté que l’expression des gènes enzymatiques antioxydants dans chaque groupe avec Haematococcus pluvialis ajouté était significativement augmentée, ce qui peut être lié à sa faible mortalité.

L’astaxanthine a également un effet bénéfique sur les poissons. Liu F. et al. [53] [traduction]ont étudié l’effet deAstaxanthine alimentaire intake on the stress resistance of Pelteobagrus fulvidraco. When fed at a dose of 80 mg·kg-1 for 60 days, it can increase the content of liver HSP70, liver SOD, and serum total protein (TP) and tolerance to acute crowding stress. Subsequent tests of attack by Proteus mirabilis showed that astaxanthin can significantly reduce the mortality of Pelteobagrus fulvidraco under crowding stress. dose for 60 days, it can increase the content of liver HSP70, liver SOD, serum total protein (TP), and tolerance to acute crowding stress. The subsequent attack test by Proteus mirabilis showed that the resistance of the astaxanthin group was significantly enhanced. Li M. Y. et al. [63] [traduction]studied the effects of astaxanthin supplementation on lipopolysaccharide-induced oxidative stress and immune Réponse à la questionin Channa argus, and found that astaxanthin can increase the expression of heat shock proteins HSP70 and HSP90 and glucocorticoid receptor genes.

Une autre étude a également révélé que l’astaxanthine inhibe la production de cytokines pro-inflammatoires en inhibant les voies de signalisation NF-κB et Les cartes[64]. Xie J. J. et al. [65] [traduction]ont ajouté de la poudre d’haematococcus pluvialis à l’alimentation de pomfret doré (Trachinotus Ovatus)avec de la poudre d’haematococcus pluvialis pendant 8 semaines, puis soumis à un test d’hypoxie aiguë (1,2 mg·L-1). Il a été constaté que le groupe suppléé par la poudre d’haematococcus pluvialis atténuait la réponse inflammatoire en activant la voie de signalisation Nef2-ARE pour antagoniser la voie de signalisation NF-κB.

4 résumé

L’astaxanthine est l’un des caroténoïdes les plus importants dans la nature et a attiré l’attention des nutritionnistes des animaux en raison de ses nombreux effets sur la santé des animaux aquatiques. L’ajout d’astaxanthine au régime alimentaire des animaux aquatiques améliore non seulement la couleur du corps des animaux, mais a également de fortes fonctions antioxydantes, anti-stress et anti-maladie, et protège les cellules et les tissus des animaux aquatiques contre le stress et les dommages oxydatifs. Avec le développement à grande échelle et intensif de la Chine et#Dans l’industrie de l’aquaculture, l’application de l’astaxanthine deviendra de plus en plus répandue.

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