Les utilisations de l’astaxanthine en Aquaculture
L’astaxanthine est un pigment caroténoïde rouge naturellement présent principalement dans les crustacés (p. ex., les crabes, les écrevisses, les homards Et etle krill), le saumSur leet d’autres organismes et organismes marins, y compris les microalgues [1-3]. Les poissons, comme les autres animaux, n’ont pEn tant quelA Aacapacité de synthétiser l’astaxanthine de novo et doivent l’obtenir à partir de la nourriture. Les poissons sauvages obtiennent de l’astaxanthine à partir de leurs proies, tandis que les poissons d’élevage l’obtiennent à partir de leur alimentation. L’astaxanthine naturelle a anti-inflammatoire, antioxydant, colorant, améliorant l’immunité, anti-athérosclérotique, anti-vieillissement et d’autres effets, et est largement utilisé dans les aliments fonctionnels, les compléments alimentaires, les boissons, les cosmétiques et les industries de soins de santé [4-6].
Au cours des dernières années, l’astaxanthine a nSur leseulement été utilisée dans les produits de santé humaine, mais aussi comme additif alimentaire dans l’élevage animAl., et al.L’utilisation de l’astaxanthine en aquaCulture et culturepeut améliorer l’immunité des animaux, réduire la mortalité et réduire l’abus d’antibiotiques [7]. De plus, l’astaxanthine joue un rôle clé dans la La pigmentationde certains animaux aquatiques, comme la truite arc-en-ciel et les poissons d’ornement [8]. Cet article passe en revue les sources, les propriétés physiques et chimiques et les applications de l’astaxanthine en aquaculture.
1 Sources d’astaxanthine
Les principauxSources de l’astaxanthineSont des micro-organismes simples, en particulier les algues, les levures, les champignons et les bactéries. L’astaxanthine ne peut pas être synthétisée biochimiquement par les animaux, mais peut s’accumuler dans les tissus animaux en mangeant des organismes contenant l’astaxanthine. Les extraits naturels d’astaxanthine contiennent habituellement d’autres types de caroténoïdes (β-carotène, canthaxanthine et lutéine) qui sont associés à l’activité biologique. Différents microorganismes et animaux marins, y compris les microalgues, la levure, les muscles du saumon sauvage et d’élevage, la truite, le krill et les écrevisses, les plantes complexes et certains oiseaux sont des sources naturelles d’astaxanthine. L’astaxanthine commerciale est généralement synthétisée chimiquement ou produite par Xanthophyllomyces dendrorhous ou hématocoquePluvialis [9-11]. La teneur en astaxanthine de la viande de saumon sauvage est de 3 à 38 mg·kg-1, tandis que celle de la viande de truite arc-en-ciel est de 12 à 25 mg·kg-1 [12]. Par conséquent, les filets de saumon sauvage et d’élevage peuvent être utilisés comme source alimentaire d’astaxanthine.
Poussés par la demande du marché et les avantages écologiques, la La productiond’astaxanthine à partir de microalgues et l’application pratique de l’astaxanthine en aquaculture sont devenus des points névroses de la recherche au cours des dernières années. Les chercheurs ont étudié l’isolement de souches de microalgues riches en astaxanthine et le mécanisme par lequel les cellules d’algues synthétisent l’astaxanthine. Actuellement, Haematococcus pluvialis, Chlorella zofingiensis et Scenedesmus obliquus ont été identifiés comme des souches d’algues ayant le potentiel de produire de l’astaxanthine naturelle (voir tableau 1). L’astaxanthine ou microalgues riches en astaxanthine ont été largement utilisés comme additifs alimentaires pour le saumon, les crevettes et les poissons ornementales pour améliorer l’immunité des animaux, prévenir l’abus d’antibiotiques et augmenter la pigmentation. L’utilisation de l’astaxanthine algale pour l’élevage du poisson a été considérée comme un moyen viable d’atteindre un développement durable dans l’industrie aquacole.
2 propriétés physiques et chimiques de l’astaxanthine
L’astaxanthine est un caroténoïdeAvec la formule moléculaire C40H52O4 (masse moléculaire relative 596,84), densité 1,071 g·mL-1, point de fusion 216 °C,et point d’ébullition 774 °C. L’astaxanthine a une faible solubilité dans l’eau et est facilement soluble dans les solvants organiques. Sa solubilité dans le dichlorométhane, le chloroforme, le diméthyl sulfoxide et l’acétone est de 30 mg·mL-1, 10 mg·mL-1, 0,5 mg·mL-1 et 0,2 mg·mL-1, respectivement [20].
La structure moléculaire de l’astaxanthine est illustrée à la Figure 1A. Il est composé d’une double liaison conjuguée au milieu composé de quatre unités d’isoprène, et d’une structure d’anneau hexamérique α-hydroxycanthaxanthine aux deux extrémités. C-3 et C-3 ' Avoir des centres chiraux. Comme un centre chiral peut avoir deux conformations, les deux atomes de carbone chiraux C-3 et C-3' De l’astaxanthine peut exister sous la forme R Rou S,ainsi l’astaxanthine a trois isomères: (3S, 3S'), (3R, 3R') et (3R, 3S') (voir Figures 1B~D), où (3S, 3L Llet#39;) et (3R, 3R ') sont des énantiomères, chaque paire d’énantiomères ayant une rotation optique opposée, ce qui fait tourner la lumière polarisée plane vers la gauche ou la droite, tandis que la (3R, 3S ') l’isomère n’a pas de rotation optique.
L’astaxanthine existe dans deux états: libre et estérifiée. L’astaxanthine synthétique est principalement à l’état libre (3S, 3R'), alors que l’astaxanthine naturelle est principalement à l’état estérifié (3S, 3S') et (3R, 3R'). L’astaxanthine produite par Rhodopseudomonas palustris est principalement le cis (3R, 3R') diester [21], et l’astaxanthine contenue dans Haematococcus Pluvialis:est principalement le all-trans (3S, 3S') monoester [22]. En tant que membre de la famille des caroténoïdes liposolubles, la structure spéciale de l’astaxanthine peut entraîner les inconvénients suivants dans l’application:
(1) hydrophobicité. L’astaxanthine est une substance huileuse avec une faible solubilité dans les solvants non polaires. L’astaxanthine a deux groupes hydroxyle à chaque extrémité, et chaque groupe hydroxyle peut interagir avec un acide gras pour former un ester. L’astaxanthine estérifiée est plus hydrophobe que l’astaxanthine libre [23].
(2) instabilité: en raison de la structure de la double liaison conjuguée non saturée, les monomères de l’astaxanthine sont extrêmement instables. Pendant le traitement et le stockage, ils sont sujets à la dégradation et à la décoloration en raison de changements dans la lumière, la température et la teneur en oxygène, ce qui les fait perdre leur activité biologique d’origine et résulte en mauvaise qualité et couleur du produit final.
3 Application de l’astaxanthine en aquaculture
Depuis longtemps, l’astaxanthine a été ajoutée à l’alimentation des poissons comme pigment naturel pour la culture du saumon, de la daurade et de certains poissons d’ornement. Au cours des dernières années, de plus en plus d’études ont révélé que l’astaxanthine avait un effet positif sur la prise de poids et la réponse immunitaire des animaux aquatiques, et l’application de l’astaxanthine a été étendue aux crustacés et à certaines espèces de poissons économiques. Les caroténoïdes sont étroitement liés à un grEt en plusnombre de fonctions physiologiques chez les plantes et les animaux. La couleur de la plupart des animaux aquatiques et des tissus d’animaux est attribuée à la présence de divers caroténoïdes [24-25]. En tant que caroténoïde principal dans les tissus des animaux aquatiques, l’astaxanthine a les fonctions de pigmentation, d’anti-oxydation et d’anti-stress.
3.1 effet de l’astaxanthine sur la fonction colorante des animaux aquatiques
La Pigmentation est un processus important dans l’élevage du saumon, de la truite, de la dorade, des poissons ornementaux et des crustacés, et les consommateurs préfèrent le saumon rose à forte teneur en astaxanthine. De plus, la valeur marchande des poissons ornementaux dépend en partie de la couleur de leur peau ou de leur couleur musculaire. La couleur des animaux aquatiques joue un rôle important dans l’acceptation par les consommateurs, la qualité perçue et le prix. Les crustacés d’élevage à coquille jaune clair ont généralement un prix de marché inférieur à ceux à coquille rouge ou orange foncé. Dans la plupart des cas, les poissons ne peuvent synthétiser les pigments dans leur corps, mais ils peuvent absorber les pigments exogènes. Par conséquent, l’ajout d’astaxanthine à la nourriture peut améliorer la capacité de coloration des poissons et des crustacés et la concentration d’astaxanthine dans leurs tissus [26-27].
Le saumon, la truite et la daurade sont largement répandu dans les océans pacifique et atlantique et sont riches en protéines, en lipides, en pigments naturels et en minéraux, ainsi qu’en d’autres nutriments essentiels pour le corps humain. Sur le marché, la pigmentation de la peau et des muscles du saumon, de la truite et de la daurade détermine dans une certaine mesure leur qualité. Cependant, dans la nature, le décldansdes ressources halieutiques a fortement limité l’offre sur le marché de ces poissons à forte valeur ajoutée. Afdansde fournir aux humains des produits aquatiques de haute qualité, l’aquaculture du saumon, de la truite et de la daurade s’est développée rapidement, ce qui a augmenté la demande du marché pour les aliments pour poissons.
Sigurgisladottir Et al.[28] [traduction]ont ajouté 88,6 mg·kg-1 d’astaxanthine à l’alimentation du saumon atlantique. Les résultats ont montré que la teneur en astaxanthine dans le musclesdu saumon du groupe expérimental était de 2, 0~ 2,5 μg·kg-1, tandis que le groupe témoin avait une teneur de 0,5 ~ 0,8 μg·kg-1, ce qui indique que l’ajout d’astaxanthine augmentait la pigmentation dans le muscle du saumon. Dans l’élevage de la truite arc-en-ciel, la teneur en astaxanthine dans l’alimentation des poissons a augmenté de 0 à 27,6 mg·kg-1, ce qui a entraîné une augmentation de la teneur totale en caroténoïdes et de la valeur du chroma musculaire dans les muscles. Avec une teneur en astaxanthine de 27,6 mg·kg-1 à 46,1 mg·kg-1, il n’y a pas eu d’augmentation significative de la teneur totale en caroténoïdes et de la valeur de chroma [29]. La raison principale de ce phénomène peut être que l’astaxanthine excessive ne peut pas être entièrement absorbée par les animaux aquatiques.
Zhang Chunyan et al. [30] ont ajouté 1,0 g·kg-1 d’astaxanthine synthétique (groupe Ast) et 4,4 g·kg-1 d’extrait d’haematococcus pluvialis (groupe HE, teneur en astaxanthine de 100 mg·kg-1) à l’alimentation de la truite arc-en-ciel, et le groupe témoin était l’alimentation de base. Après une alimentation de 6 semaines, on a constaté que la rougeur musculaire et le jaune étaient significativement plus élevés que ceux du groupe témoin. A. Kurnia et al. [31] [en]ont montré que la teneur en astaxanthine dans les tissus de daurade nourrie avec de l’astaxanthine synthétique et naturelle atteignait 7,76 mg·kg-1 et 12,7 mg·kg-1, respectivement. C. Georges et al. [32] [traduction]nourris de truites arc-en-ciel avec de l’astaxanthine synthétique (groupe AST) et de l’astaxanthine naturelle dérivée d’haematococcus pluvialis (groupe ALG), les résultats ont montré que les concentrations d’astaxanthine dans le plasma et les muscles, la saturation des couleurs musculaires (C*), la rougeur (a*) et le jaunissement (b*) de la truite arc-en-ciel du groupe AST étaient plus élevées que celles du groupe ALG,ce qui indique que l’astaxanthine provenant de sources différentes a des effets différents sur la pigmentation de différents animaux aquatiques.
Jiang J. F. et al. [33] [traduction]ont ajouté de l’astaxanthine de différentes sources et concentrations (20, 50, 75 et 100 mg·kg-1) à l’alimentation des fraises de la mer rouge (Pseudochromis fridma⁃ nii) et ont mené un essai d’alimentation de 42 jours pour étudier l’effet de l’astaxanthine sur la coloration des fraises de la mer rouge. Les résultats ont démontré que la luminosité des poissons des groupes ayant reçu 75 mg·kg-1 et 100 mg·kg-1 d’astaxanthine naturelle et 100 mg·kg-1 d’astaxanthine synthétique était significativement inférieure à celle du groupe témoin, que la saturation de la couleur de la peau était significativement plus élevée que celle du groupe témoin, et que la teinte de tous les groupes (à l’exception du groupe 25 mg·kg-1 d’astaxanthine naturelle) était significativement différente de celle du groupe témoin.
N. A. Bell et al. [34] [traduction]ont ajouté de la poudre de homard riche en astaxanthine et en protéines à la nourriture des poissons rouges (Carassius auratus) et ont constaté que la luminosité, la rougeur et le jaunissement des poissons rouges augmentaient. Wang Junhui et al. [35] ont étudié l’effet de différents niveaux d’addition d’astaxanthine sur la couleur du corps de la carpe koi (Cyprinus carpio L.), et ont constaté que l’ajout d’astaxanthine n’avait aucun effet sur la luminosité de la couleur du corps, et que la rougeur (a*) et le jaunissement (b*) de la couleur du corps avaient tendance à augmenter d’abord, puis à diminuer avec l’augmentation de l’astaxanthine en plus. En plus d’affecter la pigmentation des poissons d’ornement, l’ajout d’astaxanthine à la nourriture peut également affecter le comportement à base de couleur des poissons d’ornement. E. Lewis et al. [36] [traduction]ont constaté que l’ajout d’astaxanthine à l’alimentation des poissons roses rouges (Puntius titteya) peut réduire leur comportement d’attaque miroir et leur comportement de sélection de compagnon.
De nombreuses espèces de crustacés comme le crabe ermites, le crabe roi rouge, les écrevisses, les homards griffés, les homards épineux et les crevettes vertébrales perdront ou ne développeront pas de pigmentation si elles ne consomment pas suffisamment de caroténoïdes [37-41]. Il a été démontré que la Pigmentation chez les crevettes bananières était héréditaire [42], ce qui suggère qu’il pourrait y avoir une base génétique pour la rétention des pigments caroténoïdes. Long X. W. et al. [43] [traduction]ont constaté que lorsque des crabes chinois adultes (Eriocheir sinensis) étaient nourris avec une alimentation contenant de la poudre d’haematococcus pluvialis riche en astaxanthine naturelle, la rougeur (a*) des ovaires et des coquillages des crabes chinois augmentait de façon significative avec l’augmentation de la quantité de poudre d’haematococcus pluvialis dans l’alimentation, tandis que la luminosité (L*) et le jaunissement (b*) montraient une tendance à la baisse. Ce résultat est conforme à l’ajout de poudre d’haematococcus pluvialis au régime alimentaire, la rougeur (a*) des ovaires et des carapaces du crabe à mitaines chinois a augmenté significativement, tandis que la luminosité (L*) et la jaunesse (b*) ont montré une tendance à la baisse. Ce résultat est conforme aux résultats de recherche de Han T. et al. [44] [traduction]sur le crabe nageant (Portunus (en anglais)trituberculatus).
3.2 effet de l’astaxanthine sur la fonction antioxydante des animaux aquatiques
Les espèces réactives d’oxygène (ROS) sont un produit naturel du métabolisme aérobie dans les organismes vivants et sont un type de radicaux libres nécessaires à la survie. Les espèces réactives d’oxygène jouent un rôle important dans la régulation de certaines activités cellulaires, l’apoptose, le système immunitaire, la transcription des gènes, etc., mais elles sont très nocives pour les cellules. Pour faire face aux espèces réactives d’oxygène constamment générées, le corps s’appuie sur un système de défense antioxydante qui comprend des antioxydants enzymatiques et non enzymatiques. Les antioxydants enzymatiques comprennent la peroxydase (POX), la superoxyde dismutase (SOD) et la catalase (CAT); Les antioxydants non enzymatiques comprennent la vitamine E, la vitamine C, les oligo-éléments et les caroténoïdes. ROS est très réactif envers les lipides, les protéines et les nucléotides. La réaction des ROS avec les acides gras polyinsaturés (agpi) conduit à la peroxydation des lipides. Cette réaction produit un nouveau ROS, qui continue de réagir avec de nouveaux agpi, conduisant à un cycle de réactions oxydatives. Les animaux aquatiques sont riches en agpi n-3 et sont extrêmement vulnérables aux attaques de l’oxygène et d’autres radicaux libres.
Ces dernières années, l’astaxanthine, un antioxydant efficace trouvé dans certains organismes marins, a attiré l’attention de plus en plus des chercheurs [45-46]. Parce que l’astaxanthine contient des liaisons doubles conjuguées, des groupes hydroxyle et des groupes céÀ propos dedans sa structure moléculaire, il peut réagir avec les radicaux libres d’oxygène pour récupérer les radicaux libres et exercer un effet antioxydant. Il a été démontré que l’astaxanthine a une forte activité antioxydante, 10 fois celle des caroténoïdes (comme la canthaxanthine, le β-carotène et la lutéine), 65 fois celle de la vitamine C et 100 fois celle de la vitamine E [47]. L’activité antioxydante de l’astaxanthine se manifeste par sa capacité à récupérer l’oxygène singlet, le superoxyde et les radicaux hydroxyles, ainsi que d’autres espèces réactives d’oxygène (ROS), des espèces réactives d’azote (RNS) et à inhiber la peroxydation lipidique [48]. L’astaxanthine réagit avec la graisse pour former des esters d’astaxanthine, qui peuvent effectivement inhiber la réaction chimique entre les radicaux libres d’oxygène intracellulaire et les acides gras insaturés, réduisant ainsi les dommages oxydatifs à l’adn et aux réponses inflammatoires, améliorant le corps et#La présente invention concerne une réponse immunitaire et pénètre facilement les membranes biologiques de manière à minimiser les dommages à la membrane, protégeant ainsi la membrane et les acides gras de la peroxydation lipidique.
O. Z. Barim et al. [49] [traduction]ont ajouté de la vitamine E (VE), de la vitamine C (VC), de la vitamine A (VA), de l’astaxanthine (AST) et du β-carotène (βC) au régime alimentaire de l’écrevisse Danube (Astacus leptodactylus). Au cours de l’expérience, le nombre et la taille des œufs ont été mesurés et les teneurs en VE, VC, VA, AST, βC et malondialdéhyde (MDA) dans les tissus ont été déterminées. Les résultats ont montré que le nombre et la taille des œufs dans les groupes VE et AST étaient les meilleurs dans chaque groupe. Dans le groupe AST, la teneur en MDA dans le foie, les ovaires, les branchies et les tissus musculaires était la plus faible, ce qui indique que le groupe astaxanthine avait la résistance la plus élevée. Yi X. et al. [50] [traduction]ont montré que l’ajout d’astaxanthine au régime alimentaire de la croûte jaune pourrait augmenter l’activité du gazon et du GSH-Px dans le foie de la croûte jaune, augmentant ainsi le niveau global d’antioxydants du corps de la croûte jaune.
P. 1 et 2.1 et 2. Ma S. L. et al. [51] [traduction]ont étudié l’effet de l’ajout d’astaxanthine au régime alimentaire de Hali otus discus hannai) ajouté au régime alimentaire d’astaxanthine sur sa capacité antioxydante et ont constaté que, comparativement au groupe témoin, le groupe astaxanthine de Haliotis discus hannai contenant du gazon sérique et du chat augmentait de façon significative, tandis que la teneur en MDA diminuait de façon significative. Le gazon et le chat reflètent le corps et#39; S capacité à compenser les radicaux libres, et plus la teneur est élevée, plus la capacité antioxydante est élevée.
3.3 effet de l’astaxanthine sur la résistance au Le stresset aux maladies des animaux aquatiques
Les exploitations aquacoles à haute densité exposent souvent les animaux à divers stress physiques. Ces stress proviennent de facteurs tels que le tri, le transport, la manipulation, la vaccination et l’entassement, qui font que les animaux sont dans un état de stress élevé et d’immunosuppression, ce qui peut perturber l’équilibre dynamique entre les animaux aquatiques et leur environnement, déclenchant ainsi une réponse au stress. Un stress excessif entraîne un dysfonctionnement physiologique, une diminution du taux de croissance, une immunosuppression, une sensibilité à l’invasion de maladies et même la mort chez les animaux aquatiques [52-53]. Par conséquent, il est important d’atténuer les conditions défavorables causées par le stress dans la recherche en aquaculture.
Une étude précoce a montré qu’un apport quotidien d’un régime contenant 230-810 mg·kg-1 d’astaxanthine pendant 4 semaines pourrait améliorer la tolérance du Penaeusmonodonà un environnement riche en sel [54]. Y. H. Chien et al. [55] [traduction]ont noté qu’un régime alimentaire contenant 360 mg·kg-1 d’astaxanthine pendant une semaine pourrait entraîner une tolérance à de faibles concentrations d’oxygène dissous chez les larves de P. monodon. Après avoir été testé avec différents facteurs de Le stress,Penaeus monodonnouri avec un régime contenant de l’astaxanthine (80 mg·kg-1) pendant 8 semaines a montré une plus grande capacité de défense antioxydante (taux de gazon plus bas) et une meilleure fonction hépatique (AST et ALT plus bas), ainsi qu’une meilleure résistance au stress hyperosmotique et thermique.
De même, lorsqu’il a reçu un régime contenant 71,5 mg·kg-1 d’astaxanthine pendant 8 semaines, Penaeus monodon a montré un statut antioxydant étonnant et une résistance au stress ammoniacal à différents niveaux (0,02, 0,2, 2,20 mg·L-1) [56].
Une diminution du SOD, de l’ast et de l’alt indique que diverses enzymes antioxydantes dans les tissus de P. monodon sont consommées après un stress biologique, ce qui améliore la capacité antioxydante et la fonction hépatique. Les études ci-dessus montrent que l’astaxanthine est un nutriment très important pour P. vannamei sous le stress physiologique causé par la pression externe. K. Supamattaya et al. [57] [traduction]nourris de P. vannamei avec un aliment contenant 200 à 300 mg·kg-1 d’extrait de Dunaliella salina, pourraient tolérer des environnements à faible teneur en oxygène de 0,8 à 1 mg·L-1 et résister de façon significative au symptômes de complicationsdes points blancs viraux (WSSV). Il a également été constaté que le tissu de Penaeus monodon nourrie avec l’extrait de Dunaliella salina avait une teneur plus élevée en astaxanthine, indiquant qu’ils pourraient rapidement convertir le β-carotène en astaxanthine.
Des résultats similaires ont été observés dans un grEt en plusnombre d’études sur Litopenaeus vannamei et d’autres crustacés. Zhang J. et al. [58] [traduction]ont constaté que Litopenaeus vannamei (avec un supplément alimentaire de 125 à 150 mg·kg -1 d’astaxanthine, en plus de faire augmenter les niveaux d’expression du facteur hypoxique inducible (HIF-1α), de la superoxyde dismutase de manganèse cytosolique (cMnSOD) et de l’adn du chat, augmentait également la capacité antioxydante totale et la tolérance au stress hypoxique (0,8 mg·L-1). Dans une étude connconnée, Niu J. et al. [59] [traduction]ont démontré que l’alimentation d’un régime combiné d’astaxanthine (100 mg·kg-1) et de cholestérol (1%) augmentait l’expression du gène de l’arnm du facteur HIF-1α et de la protéine de choc thermique HSP70 chez la crevette Vanamei, ce qui a amélioré sa tolérance au cours d’un transport In vivo simulé de 36 heures.
Wang H. et al. [60] [traduction]ont également constaté qu’après avoir reçu 80 mg·kg-1 d’astaxanthine pendant 4 semaines, Penaeus vannamei présentait une résistance élevée au Virus:du syndrome des taches blanches (WSSV), qui était liée à l’amélioration des indicateurs immunitaires de l’hémolymphe tels que l’activité phagocytique, le nombre total de globules sanguins, l’activité phénoloxidase sérique, l’activité radicale antisuperoxyde sérique, l’activité lysozyme sérique et l’activité antibactérienne sérique. Après 10 semaines de régime alimentaire contenant différentes doses d’astaxanthine (50-150 mg·kg-1), la crevette japonaise (Macrobrachium nipponense) peut tolérer divers stress physiques et chimiques, tels que l’apport anoxique (0,5 mg·L-1), le stress ammoniacal (0,75 mg·L-1) et le stress au froid (0 ℃) [61]. Jiang X. D. et al. [62] [traduction]ont ajouté de 30 à 120 mg·kg-1 De la poudre d’haematococcus pluvialis, et a constaté que par rapport au groupe témoin (sans ajout de poudre d’haematococcus pluvialis), la mortalité de chaque groupe ajouté était considérablement réduite en cas de stress ammoniacal. Il a également été constaté que l’expression des gènes enzymatiques antioxydants dans chaque groupe avec Haematococcus pluvialis ajouté était significativement augmentée, ce qui peut être lié à sa faible mortalité.
L’astaxanthine a également un effet bénéfique sur les poissons. Liu F. et al. [53] [traduction]ont étudié l’effet de l’apport alimentaire d’astaxanthine sur la résistance au stress de Pelteobagrus fulvidraco. Lorsqu’il est administré à une dose de 80 mg·kg-1 pendant 60 jours, il peut augmenter la teneur en HSP70 du foie, en gazon du foie et en protéines totales sériques (TP) et la tolérance au stress aigu de surpopulation. Des tests ultérieurs d’attaque par Proteus mirabilis ont montré que l’astaxanthine peut réduire de manière significative la mortalité de Pelteobagrus fulvidraco sous le stress de surpopulation. Dose pendant 60 jours, il peut augmenter la teneur en HSP70 du foie, SOD Ddu foie, protéines totales sériques (TP), et la tolérance au stress d’entassement aigu. Le test d’attaque ultérieur de Proteus mirabilis a montré que la résistance du groupe astaxanthine était significativement augmentée. Li M. Y. et al. [63] [traduction]ont étudié les effets de la supplémentation en astaxanthine sur le stress oxydatif induit par les lipopolysaccharides et la réponse immunitaire chez Channa argus, et ont constaté que l’astaxanthine peut augmenter l’expression des protéines de choc thermique HSP70 et HSP90 et des gènes des récepteurs des glucocorticoïdes.
Une autre étude a également révélé que l’astaxanthine inhibe la production de cytokines pro-inflammatoires en inhibant les voies de signalisation NF-κB et Les cartes[64]. Xie J. J. et al. [65] [traduction]ont ajouté de la poudre d’haematococcus pluvialis à l’alimentation de pomfret doré (Trachinotus Ovatus)avec de la poudre d’haematococcus pluvialis pendant 8 semaines, puis soumis à un test d’hypoxie aiguë (1,2 mg·L-1). Il a été constaté que le groupe suppléé par la poudre d’haematococcus pluvialis atténuait la réponse inflammatoire en activant la voie de signalisation Nef2-ARE pour antagoniser la voie de signalisation NF-κB.
4 résumé
L’astaxanthine est l’un des caroténoïdes les plus importants dans la nature et a attiré l’attention des nutritionnistes des animaux en raison de ses nombreux effets sur la santé des animaux aquatiques. L’ajout d’astaxanthine au régime alimentaire des animaux aquatiques améliore non seulement la couleur du corps des animaux, mais a également de fortes fonctions antioxydantes, anti-stress et anti-maladie, et protège les cellules et les tissus des animaux aquatiques contre le stress et les dommages oxydatifs. Avec le développement à grande échelle et intensif de la Chine et#Dans l’industrie de l’aquaculture, l’application de l’astaxanthine deviendra de plus en plus répandue.
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