Quels sont les avantages des Oligosaccharides MOS pour l’élevage des animaux?

Manno-oligosaccharides (MOS) are widely found in konjac flour, guar gum, gelatin and yeast cell wall, very soluble in water, insoluble in organic solvents, and are oligosaccharides composed of α-1,2, α-1,3 and α-1,6 glycosidic bonds. Compared with antibiotics and microecological agents, mannan oligosaccharides have the advantages of high efficiency, safety and environmental protection, which can reduce the number of Escherichia coli and Salmonella, increase the number of Lactobacillus and Bifidobacterium, effectively improve the microflora of the intestinal flora, increase the daily weight gain of the animal and the feed conversion rate, and enhance the body' S résistance aux maladies. En tant que nouvel additif alimentaire efficace et respectueux de l’environnement, il a une application prometteuse en nutrition animale.

1 fonctions physiologiques des manno-oligosaccharides

1.1 régulation de l’environnement gastro-intestinal

Mannan oligosaccharide peut favoriser la prolifération de micro-organismes bénéfiques et inhiber la reproduction de micro-organismes nuisibles, et peut adsorber des bactéries pathogènes. Certaines études montrent que mannan oligosaccharide peut adhérer à l’agglutinine de bord externe de 11 types d’e. coli, qui peut bloquer la combinaison de l’agglutinine de bord externe des pathogènes intestinaux et les molécules de sucre spécifiques sur la surface des cellules épithéliales muqueuses, de sorte que les pathogènes intestinaux peuvent 't être planté dans le trite gastro-intestinal et se propager, de sorte que la flore bactérienne bénéfique de l’intestin puisse être cultivée et propagée, et la micro-écologie intestinale peut être améliorée, ce qui est plus propice à la digestion et à l’absorption de l’organisme.

1.2 amélioration de l’immunité

Quand un certain MOS existe dans le tractus intestinal, les oligosaccharides se combinent de façon competitive avec des lectines exogènes à la surface des bactéries pathogènes, ralentissant ainsi l’absorption des antigènes et augmentant la puissance des antigènes, améliorant ainsi les réponses immunitaires cellulaires et humorales des animaux. Shao Liangping a montré que l’administration orale d’oligosaccharides de mannan pouvait augmenter significativement la teneur sérique en IgG des porcelets en lactation (P< 0,05) et la teneur sérique en IgA (P< 0,01), et les oligosaccharides de mannan pouvaient également augmenter significativement le taux de conversion des lymphocytes phytoalexin, la phagocytose des leucocytes et le nombre total de lymphocytes t chez les porcelets en lactation (P< 0,01), tandis que la glutathion peroxydase chez les porcelets en lactation (P< 0,01).#39; Le sang a également augmenté (P< 0,05), et le nombre total de lymphocytes t dans les porcelets et#39; Le sang a également augmenté (P< 0,01). Les teneurs en glutathion peroxydase (GSH-Px) et en superoxyde dismutase (SOD) dans le sang des porcelets ont également augmenté significativement (P< 0,01). Zhou Hongli et al. ont également souligné que l’ajout d’oligosaccharide de mannan dans l’alimentation des porcelets sevrés augmentait significativement la teneur sérique en IgG, et que les teneurs en IgA et en IgM étaient plus élevées que celles du groupe témoin, ce qui a conduit à la conclusion que l’oligosaccharide de mannan a un certain effet sur le système immunitaire humoral121. Les résultats de cette étude montrent que l’oligosaccharide de mannan a un effet significatif sur le système immunitaire des porcelets.

1.3 Adsorption ou fixation de mycotoxines

Manno-oligosaccharides  powder can eliminate the harmful effects of mycotoxins by physisorption or direct binding to mycotoxins. It has been found that mannan oligosaccharides bind zearalenone, aflatoxin, and hesperidin, and Zaghini et al. demonstrated that the addition of yeast cultures degraded or bound up to 88% of aflatoxin B in an in vitro liquid culture medium. Raju et al. found that the binding of mannan oligosaccharide to aflatoxin, zearalenone and ochratoxin was 82.5%, 51.6% and 26.4% respectively in an in vitro test simulating the digestive tract of broiler chickens41 .

2 Application de lamanno-oligosaccharidesDans l’élevage des animaux

 2.1 porcs

Yue Wenbin et al. added mannan oligosaccharide 0.5% to the basal diet of weaned piglets at 35 days of age, and the test results showed that the concentration of Escherichia coli in the cecum and colon of the test group was significantly lower (P<0.05) and the concentration of Lactobacillus and Bifidobacterium lactis and Bifidobacterium bifidum in the cecum was significantly higher (P<0.05) compared with that of the control group ⁵¹ . Zhang Caiyun et al. added galactomannan oligosaccharides 0.12% (treatment 1), aureomycin 50 mg-kg¹ + galactomannan oligosaccharides 0.08% (treatment 2), aureomycin 100 mg-kg-¹ (treatment 3) to the basal diets of weaned piglets at 28 days of age, and compared the results, they found that the average daily weight gain and average daily feed intake were highest in treatment 1, which was 17.55%, 7.13%¹6 and 7.13%¹6 higher than that of treatments 2 and 3, respectively. and 7.13%¹6]. Wu Chunzao et al. added 100 mg-kg-¹ of hygromycin and 0.2% of mannan oligosaccharide to the weaning basal diet at 30 days of age, and the results showed that the addition of mannan oligosaccharide increased the daily weight gain of piglets and reduced the feed-to-meat ratio, and the difference with the control group was significant (P<0.05); the levels of total protein, urea nitrogen, and total cholesterol in the serum were significantly reduced (P<0.05), and the activity of SOD in the serum was significantly increased (P<0.05), and the activity of SOD in the serum was significantly increased (P<0.05). activity was significantly increased (P< 0.05)⁷.

Shao Liangping and Zhou Hongli also reported that MOS significantly increased the serum IgG level of weaned piglets¹-2). Huang Junwen et al. reported that the addition of mannan oligosaccharide to the diet of weaned piglets La longueur des petites villosités de l’intestin était plus élevée que celle du groupe blanc, tandis que la profondeur des crypts était inférieure à celle du groupe blanc (8).

Chen Lixiang et al. ont montré que l’ajout de MOS 0,15% augmentait significativement l’interleukine-6, le cortisol et l’hormone de croissance dans le lait, et augmentait le volume de lactation et la teneur en protéines de lait des truies par rapport au groupe témoin (P< (0.05)¹91. Wang Bin et al. ont rapporté que l’ajout de MOS aux truies ayant le même niveau nutritionnel augmentait significativement le volume de lactation des truies par rapport au groupe témoin et abaissait le rapport fourrages/lait (p & E; Lt; 0,05), et a eu un effet modificateur sur la fonction endocrinienne10. Il a été rapporté par Wang Bin et al. que lorsque le niveau nutritionnel des semis et#39; Les régimes alimentaires étaient les mêmes, l’ajout du groupe MOS pouvait augmenter significativement le volume de lactation et réduire le rapport aliments/lactation par rapport au groupe témoin (P&&;;; 0,05), et il avait également un certain effet régulateur sur la fonction endocrinienne10.

2.2 volailles

2.2.1 poulets

Yu Guiyang et al. ont rapporté qu’une quantité appropriée d’oligosaccharide de mannan peut favoriser la prolifération des bifidobactéries dans le cecum et l’iléon, et également favoriser la prolifération des lactobacilles dans l’iléon et le cecum, et inhiber la croissance de Escherichia coli. Les Manno-oligosaccharides peuvent remplacer partiellement ou complètement les antibiotiques dans les régimes alimentaires pour poulets de chair, et l’effet des Manno-oligosaccharides est meilleur lorsque la quantité de Manno-oligosaccharides est ajoutée à 0,5 ~1 g-kg-". Zhang Jianbin et al. ont étudié l’effet du remplacement des antibiotiques par des oligosaccharides de mannan sur la flore intestinale des poussins pondants, et les résultats de l’étude ont montré que le nombre de bifidobactéries et de lactobacilles dans le cecum et l’iléon des poussins pondants était significativement augmenté dans le groupe des oligosaccharides de mannan par rapport au groupe témoin et au groupe antibiotique (P< 0,05), Et le nombre d’ Escherichia coli dans le tractus intestinal des poussins pondus a été significativement réduit dans le groupe des oligosaccharides de mannan par rapport au groupe témoin (P< 0,05).12]. Zhang Haitang et al. ont mis en place trois groupes expérimentaux, à savoir le groupe I (régime de base + mo 0,5 g-kg¹), le groupe II (régime de base + mo 1,0 g-kg¹) et le groupe III (régime de base + mo 2,0 g-kg¹), et comparé au groupe témoin, la prise de poids quotidienne moyenne des groupes expérimentaux a augmenté de 2,11 %, 3,15 % et 1,24 %, respectivement; Et les rapports fourrages/poids ont été réduits de 2,14%, 2,56%, et 0,85%, respectivement, 2,56% et 0,85%, respectivement; L’indice de thymus, l’indice de rate et l’indice de bursa du groupe d’essai II ont été augmentés de 26,02%, 30,82% et 16,87%, respectivement, et l’ajout de MOS de 1,0 mg-kg était approprié pour améliorer la performance et l’immunité des poulets de chair ¹3.

Chen Yongjun et al. ont ajouté du MOS aux aliments de base des poulets de chair et des poules pondeuses, et les résultats ont montré que les lymphocytes T dans le sang périphérique des poulets de chair dans le groupe expérimental étaient plus élevés que ceux du groupe témoin, avec une différence très significative (P< 0,01), et les anticorps contre la maladie de Newcastle chez les poules pondeuses étaient significativement plus élevés que ceux du groupe témoin (P< 0,05), Et le gain de poids des poulets de chair dans le groupe expérimental à différents endroits était plus élevé que celui du groupe témoin de 312,5 g et 94,5 g, avec une différence significative (P< 0,05), et le taux de survie a augmenté de 0,7% et 2,3% respectivement ¹4. Les différences étaient significatives (P< 0,05), et le taux de survie a augmenté de 0,7%, 2,3% ¹4. Sims et al. ont souligné que MOS avait pour effet d’améliorer la performance des dindons, et MOS a augmenté le niveau d’iga dans la muqueuse des dindons, et a augmenté significativement le niveau d’igg dans le sang. La MOS peut favoriser la prolifération des lymphocytes T dans le sang périphérique et augmenter le pourcentage de lymphocytes T. Wang Quan et al. ont ajouté 25 g-kg¹ de MOS à l’alimentation des poules de grilleur et ont montré que le MOS avait un effet stimulant significatif sur les amygles suprachoroïdiennes, le thymus et le cecum, le poids de la bourse et du thymus suprachoroïdiens augmentant respectivement de 37,6 % et de 11,5 % par rapport au groupe de contrôle.16 Zhou Yinghua et al. ont montré que l’ajout de MOS 1 g-kg¹ à l’alimentation de base des poulets de chair augmentait significativement le pourcentage de lymphocytes T (p< 0,01) dans le sang. Zhou Yinghua et al. ont montré que l’ajout de MOS 1g-kg¹ au régime de base des poulets de chair augmentait significativement le pourcentage de lymphocytes T dans le sang (P< 0,05), et augmentait également le pourcentage de lymphocytes T dans le sang (P< 0,05).

Teneur en IgA, IgG et IgM 7.

2.2.2 les canards

Zang Su-min et al. reported that adding 0.05%, 0.1%, 0.2% and 0.4% of mannan oligosaccharides to the diet of Cherry Valley ducks, respectively, showed that adding 0.1% of mannan oligosaccharides increased the final body weight of broiler ducks by 5.96%; the average daily weight gain increased by 6.65%; the utilization rates of dry matter, crude ash, and crude protein were increased by 9.21%, 22.09%, and 10.64%, respectively; the number of Lactobacillus spp. The number of Lactobacillus spp. increased significantly (P<0.05), and the number of E. coli and pH decreased significantly (P<0.05).08 Gao Shudong et al. showed that the addition of mannan oligosaccharides to diets significantly increased the daily weight gain of broiler ducks.9 In addition, the daily weight gain of broiler ducks increased by 6.65%, dry matter, crude ash and crude protein utilization increased by 9.21%, 22.09% and 10.64% respectively.

2.2.3 caille

Zhang Aiwu et al. ont ajouté 0,5%, 1,0%, et 2,0% à l’alimentation de base (groupes d’essai I, II, et III), et le poids frais du cœur, du foie et du pancréas de la caille de viande de 50 jours dans le groupe d’essai I a augmenté de 10,00%, 17,00%, et 5,00%, respectivement, par rapport au groupe témoin; Les poids frais bursa et les poids frais heart du groupe II ont augmenté respectivement de 13,04% et 11,00% par rapport au groupe témoin; Les poids des cailles de 35 et 50 jours dans le groupe III ont augmenté respectivement de 7,14 % et de 8,00 % par rapport au groupe témoin 20. Le poids frais de la bursa et du cœur dans le groupe II était de 13,04% et 11,00% plus élevé que celui du groupe témoin, tandis que dans le groupe III, le poids frais du cœur était de 7,14% et 8,00% plus élevé que celui du groupe témoin à l’âge de 35 et 50 jours, respectivement20.

2.3 les Ruminants

2.3.1 bovins

Bao Yan'an et al. ont montré que l’ajout de 20 d. -¹- tête ¹ d’oligosaccharides de mannan au régime de base des vaches laitières a entraîné des différences significatives (P< 0,05) dans le rendement laitier, le pourcentage de matière grasse du lait et le nombre de cellules somatiques du groupe expérimental de vaches par rapport au groupe témoin, et l’ajout d’une certaine quantité d’oligosaccharides de mannan au régime a eu un effet positif sur le rendement laitier et la composition conventionnelle du lait des vaches laitières Holstein. Tan Xueying et al. ont montré que le pourcentage moyen de matières grasses du lait des vaches Holstein augmentait de 0,48% avec l’ajout d’oligosaccharides de mannan au régime alimentaire par rapport au groupe témoin, avec une différence significative (P< 0,05)²2. Wang Dingfa et al. ont testé les IgG et les IgA dans le sang des veaux avant et après le test et ont constaté que le MOS augmentait significativement les niveaux d’iga et d’igg dans le sang, en plus d’augmenter significativement la prise de poids et l’efficacité économique.23 Franklin et al. ont montré que l’alimentation en MOS augmentait les réponses immunitaires spécifiques aux rotavirus chez les vaches en période sèche24. Selars et al. ont rapporté que les oligosaccharides de mannan augmentaient significativement la prise de poids quotidienne et réduisaient la morbidité des vêles25. De plus, le pourcentage moyen de matières grasses du lait des vaches était de 0,48 % plus élevé que celui du groupe témoin. Selars et al. ont rapporté que les oligosaccharides de mannan augmentaient significativement le gain de poids quotidien des veaux et réduisaient le taux de morbidité (P< 0,05)²5. Zhao Xiaojing et al. ont étudié l’effet de 0,1% et 0,2% de mannan oligosaccharide sur la flore intestinale des veaux, et les résultats ont montré que, de 7 à 21 jours d’âge, le nombre d’e. coli dans le groupe témoin, le groupe 0,1% et le groupe 0,2% a diminué respectivement de 38,34%, 68,37% et 55,33% par rapport à celui au début de l’expérience; Le nombre de bacilles de l’acide lactique a augmenté de 12,20%, 41,25% et 17,49%; Le nombre d’e. coli dans le groupe témoin, le groupe de 0,1 %, le groupe de 0,2 % a augmenté de 12,20 %, 41,25 % et 17,49 % respectivement, et le nombre d’individus de Lactobacillus a augmenté de 17,49 %. À l’âge de 21~35 jours, le nombre d’e. coli de chaque groupe a diminué de 16,82%, 24,14% et 32,39% respectivement par rapport à celui du début de l’expérience, tandis que le nombre de lactobacilles a augmenté de 2,33%, 17,49% et 7,15%, respectivement. On peut voir que la flore bactérienne intestinale des veaux a été optimisée par l’alimentation des mannan-oligosaccharides, le rapport des comptages d’e. coli de Lactobacillus et d’e. coli a été augmenté, et il a été augmenté par la plupart dans le groupe des mannan-oligosaccharides de 0,1%.25 Les résultats ont été les suivants.

2.3.2 ovins

Ling Baoming et al. ont fait remarquer que l’ajout d’mos aux régimes alimentaires pourrait améliorer la fermentation du rumen chez les moutons en croissance dans une certaine mesure, mais le mécanisme de l’mos pour améliorer la fermentation du rumen et la quantité appropriée d’mos à ajouter aux régimes alimentaires doivent être étudiés plus en détail (7). Les résultats de cette étude montrent que le MOS peut améliorer dans une certaine mesure la fermentation du rumen chez les moutons en croissance.

2.4 animaux aquatiques

Ma Zhihong et al. ont mené une étude comparativeEssai d’alimentation avec mannan-oligosaccharides comme additifs alimentaires pour la carpe....... Les résultats de l’étude ont montré que le coefficient alimentaire, le taux de gain de poids relatif, le taux de phagocytose des leucocytes, l’indice phagocytaire, l’indice rate et l’activité hémolytique de la carpe ont augmenté de 1,52 %, 34,03 %, 32,47 %± 3,72 %, 1,76 ± 0,17, 0,36 ± 0,02 et (51,53 ± 3,31) U, et le pourcentage de bactéricides dans le sérum était de 27,85 %± 6,00 %, 22,46 %± 4,88 % dans le groupe d’essai et le groupe témoin, respectivement. 51,53 ± 3,31)U, et le pourcentage sérique de bactéricides de la carpe dans le groupe d’essai et le groupe témoin étaient respectivement de 27,85% ± 6,00%, 22,46% ± 4,88%, et les oligosaccharides de mannan pourraient améliorer la performance de croissance et la fonction immunitaire non allergique de la carpe 128. Liu Aijun et al. ont rapporté que l’ajout de MOS de 5 g-kg¹ à l’alimentation du tilapia a augmenté le taux de gain de poids de 19,2 %, abaissant le coefficient d’alimentation de 13,4 % et réduisant le facteur de matière sèche de 13,4 %. Liu Aijun et al. ont rapporté que l’ajout de MOS de 5 g-kg¹ à la nourriture pour tilapia augmentait le taux de gain de poids de 19,2 %, diminuait le coefficient d’alimentation de 13,4 % et augmentait la digestibilité de la matière sec et la digestibilité des protéines de 12,9 % et 3,4 % respectivement, et que l’ajout d’oligosaccharides de mannan augmentait significativement la hauteur, la largeur et la densité des villosités 129. Li Yunlan a indiqué que le MOS favorisait la croissance des bifidobactéries et du bacille de l’acide lactique, des bactéries bénéfiques de l’intestin aquatique. L’ajout de 270 mg-kg¹ de MOS à l’intestin antérieur, à l’intestin moyen et à l’intestin postérieur de jeunes carpes a augmenté les concentrations massiques de Lactobacillus et de Bifidobacterium de 3,23%, 2,93% et 2,27%, respectivement, comparativement au groupe témoin 30.

2.5 autres animaux

Gao Qiyu et al. ont constaté que l’ajout de MOS augmentait significativement l’absorption des nutriments dans le côlon et le tractus intestinal du rat, et améliorait la fonction du côlon.3 Il a été démontré que la combinaison de MOS et de zinc organique réduisait significativement la profondeur de la crypte, augmentait le rapport longueur des villottes/profondeur de la crypte et augmentait l’absorption des nutritions4. En outre, le MOS et le zinc organique ont également montré qu’ils augmentaient l’activité des enzymes du tissu hépatique (SOD, CAT, GSH-Px, etc.) chez la souris. Wang Fang et al. ont montré que MOS 1~2g -kg¹ pourrait augmenter l’activité des enzymes du tissu hépatique (SOD, CAT, GSH-Px, etc.), augmenter le niveau de glutathion (GSH), augmenter la capacité antioxydante totale du tissu hépatique et le taux de récupération des radicaux hydroxyles (-OH), et diminuer la teneur en malondialdéhyde (MDA) et le niveau des espèces réactives d’oxygène (ROS) chez les souris; Le MOS a été efficace dans le piégeage de l’oh in vitro; Et MOS a été efficace dans le piégeage -OH chez les souris. MOS peut effectivement éliminer -OH in vitro; Chez la souris, l’ajout d’une quantité appropriée de MOS peut améliorer la capacité antioxydante des tissus du foie et protéger le foie contre divers stress oxydatif2.

3 résumé

En tant que nouveau type d’additif alimentaire sûr, efficace et respectueux de l’environnement, mannan oligosaccharide résiste aux problèmes de perturbation de l’homéostase microbienne intestinale, de résistance aux médicaments et de résidus de médicaments causés par l’utilisation à long terme d’antibiotiques; Un grand nombre d’études expérimentales ont montré que les oligosaccharides de mannan sont capables d’améliorer efficacement la performance de la production animale, de conduire les bactéries intestinales bénéfiques à prendre la position dominante, et d’améliorer l’immunité des animaux, mais le mécanisme de l’action du MOS, et l’effet de différents dosages d’additifs nécessitent des recherches plus poussées. Le mécanisme d’action du MOS et l’effet des différents additifs doivent être étudiés plus en détail.

Références:

[1] SHAO Liang-Ping, ZHOU Lun-Jiang, FEI Zheng-Fang et al. Effets de l’oligosaccharide de mannan sur la fonction immunitaire et les enzymes antioxydantes sanguines chez les porcelets [J]. Journal of Nutrition, 2000,22(1):82-84.

[2] ZHOU Hongli, ZHANG Shirui, HE Jianhua. Effets des mannan-oligosaccharides sur la flore intestinale et les niveaux d’antimicrobiens chez les porcelets sevrés et leurs performances de croissance [J]. Journal of Hunan Agricultural University, 2002,28(2):135-138.

[3]Zaghini A,Martelli G,Roncada P,et al.Mannan oligosaccharides and aflatoxin B1 in feed for laying hens:effects on egg quality,af- latoxines BI and M1 résidus in eggs, and aflatoxin Bl levels in liv- er[J].Poultryscience,2005,84(6):825-832.

[4]Raju MVL N,Devegowda G.Influence du glucomane estérifié sur la performance et la morphologie des organes, la biochimie sérique et l’hématologie chez les poulets de chair exposés à des mycotoxicose individuelles et associées (aflatoxine, ochratoxine et toxine T-2)[J]. British Poultry Science,2000,41(5):640-650.

[5] YUE Wen-Bin, CHE Xiang-Rong, ZANG Jian-Jun, et al. Effets de l’oligosaccharide de mannan sur la flore intestinale principale des porcelets sevrés [J]. Journal of Laser Biology, 2002,11(4):247-250

[6] ZHANG Caiyun, MA Yanhe. Effet de l’oligosaccharide de mannan sur la performance de croissance des porcelets sevrés précocement [J]. Feed Research, 2003(3):1-3.

[7] WU Chun-zao, WANG Jian-hua. Effets des bactéries de l’acide lactique et de l’oligosaccharide de mannan sur la croissance et les indices biochimiques sériques des porcelets sevrés [J]. Jiangsu Agricultural Journal, 2011,27(1):94-99.

[8] HUANG Jun-Wen, LIN Ying-Cai, FENG Ding-Yuan. Effets des mannan-oligosaccharides sur la microécologie intestinale [J]. Veterinary medicine and feed additives, 2005,10(3):11-13.

[9] CHEN Lixiang, CHEN Jianrong, TAN Liangxi, et al. Effets du niveau nutritionnel et des oligosaccharides de mannan sur le volume de lactation, la composition de routine du lait et les niveaux d’hormones dans le lait des truies [J]. Journal of Hunan Agricultural University, 2007,33(1):57-60.

[10] WANG Bin, HUANG Ruilin, HE Zishuang, et al. Effet de l’application de l’oligosaccharide de galactomannan sur les truies en lactation au lieu des antibiotiques [J]. Anhui Agricultural Science, 2006,34(3):483-484,605.

[11] YU Guiyang, ZHANG Wu, ZHENG Chunfang. Effets des mannan-oligosaccharides sur les micro-organismes intestinaux chez les poulets de chair [J]. Veterinary medicine and feed additives,2004,9(5):7-9.

[12] ZHANG Jian-Bin, CHE Xiang-Rong, YANG Hua. Effets des mannan-oligosaccharides sur la flore intestinale des poussins pondants au lieu des antibiotiques [J]. Feed Expo, 2010(5):29-30.

[13] ZHANG Haitang, WANG Yanrong, CUI Yanhong. Effets du mannan-oligosaccharide remplaçant la flavomycine sur la performance de production et la fonction immunitaire des poulets de chair [J]. Guizhou Agricultural Science, 2008,36(2)114-116.

[14] CHEN Yongjun, WANG Quan, QIAN Yingjuan et al. Effets de l’oligosaccharide de mannan (MOS) sur l’immunité et la performance des poulets de chair et des poules pondeuses [J]. Shanghai Animal Husbandry and Veterinary Medicine Newsletter, 2004(5):24-25.

[15]Sims M D,Dawson K A,Newman K E,et al.Effects of dietary mannan oligosaccharide, bacitracine méthylène disalicylate,or both on the live performance and intestinal microbiology of dinkeys [J]. Poultry science,2004,83(7):1148-1154.

[16] WANG Quan, CHEN Yongjun, QIAN Yingjuan. Effet de l’oligosaccharide de mannan sur la fonction immunitaire des lymphocytes du sang périphérique chez les poulets [J]. Chinese Veterinary Science and Technology, 2002,32(1):28-29.

[17] ZHOU Yinghua, ZHANG Shirui. Effets des mannan-oligosaccharides sur les performances de production, les micro-organismes intestinaux et la fonction immunitaire des poulets de chair [J]. Journal of Hunan Agricultural University, 2003,29(3):15-17.

[18] ZANG Su-Min, SONG Yong, LI Tong-Zhou et al. Effets des oligosaccharides de mannan sur la performance de production, l’utilisation des nutriments et la flore cecale des canards de la vallée des cerises [J]. Livestock and Veterinary Medicine, 2005,37(10):14-16.

[19] Gao Shudong, Ma Jian, Ji Mingshan et autres. Etude et étude des effets des régimes de type blé complétées par des enzymes wamylose et maltogène sur le rendement des poulets de chair [J]. Feed Wide Angle, 2003(4): 33-35.

[20] Zhang Aiwu, Xue Jun. effets de mannan-oligosaccharides sur les organes internes de caille de viande [J]. Anhui Agricultural Science, 2011,39(13):7814-7816.

[21] Bao Yan'an, Xing Shufang, Xu Qinglong. Effets des oligosaccharides de mannan sur le rendement laitier et la routine laitière des vaches laitières Holstein [J]. Feed Research, 2009(2):27-29.

[22] Dart Xueying, Qin Xijie. Recherche sur l’effet de l’oligosaccharide de mannan et de l’enzyme complexe de cellulose sur le taux de graisse du lait des vaches laitières [J]. Modern Animal Husbandry and Veterinary Medicine, 2009(6):24-25.

[23] WANG Dingfa, HUANG Daiyong, YAN Bangfu. Effet de l’oligosaccharide de mannan sur la prise de poids et l’immunoglobuline sanguine chez les veaux [J]. Shanghai Animal Husbandry and Veterinary Medicine Newsletter, 2005(6):18.

[24]Franklin ST,Newman M C,Newman KE,et al.Immune parame- tersofdry cows fed mannan oligosaccharide et trans- fer de l’immunité aux veaux [J Journal of Dairy Science,2005,88(2):766-775.

[25]Selars K,Burrill M,Trei J,et al.effet de la supplémentation mannan-oligosaccha- ride sur la performance et la santé des veaux Holstein [J]. J produits laitiers 1997,80(1):188.

[26] ZHAO Xiaojing, LI Jianguo, LI Qufeng et al. Étude sur l’effet de l’oligosaccharide de mannan sur la flore fécale des veaux [J]. Chinese Journal of Animal Husbandry, 2007,43(5):31-33.

[27] LING Baoming, QU Mingren, LU Dexun. Effet de l’oligosaccharide de mannan sur la fonction de fermentation du rumen chez les moutons en croissance (in vitro)[J]. Feed Expo, 2006(9):6-7.

[28] Ma C-H, Jin J, Liu H-M. Et al. Effets de l’oligosaccharide de mannan sur la croissance et la fonction immunitaire de la carpe [J]. Anhui Agricultural Science, 2010,38(3):1291-1292,1296.

[29] LIU Aijun, LENG Xiangjun, LI Xiaoqin, et al. Effets de la flavomycine et de l’oligosaccharide de mannan sur la performance de croissance et l’immunité sérique non spécifique de Oniola tilapia[J]. China Feed, 2009(3):29-30.

[30] Li Yunlan. Effets de l’oligosaccharide de mannan sur la flore intestinale et la fonction immunitaire de la jeune carpe Jian [D]. Mon 'an: université d’agriculture du Sichuan, 2004.

[31] Gao Qi-Yu, Li Yan-Lan, Xu Guang-Cui et autres. Effets de l’oligosaccharide de mannan sur la structure du SPF du côlon du rat [J]. Journal of Xinxiang Medical College, 2006,23(5):437-439.

[32] WANG Fang, LOK Guowei, SHI Yunhui et autres. Effets de l’oligosaccharide de mannan sur l’élimination des radicaux libres et l’activité des enzymes antioxydantes dans le foie de souris [J]. Journal of Nutrition, 2007,29(5):466-469.