Qu’est-ce que Mannan Oligosaccharide?
LesMannooligosaccharides,égalementconnussous le nom d’oligosaccharides de mannan et d’oligosaccharides de glucomannane, sont une classe de substances antigéniquement actives extraites des parois cellulaires des cultures de levure, qui sont largement trouvées dans les parois cellulaires de nombreux micro-organismes, ainsi que dans les graines et les tubercules des plantes, telles que la citronnelle gélatinisée, la farine de konjac et la gomme de guar. Il a été constaté que les mannan-oligosaccharides ont une variété d’activités biologiques, qui peuvent améliorer l’immunité animale, réguler le métabolisme des glucose-lipides et maintenir la santé intestinale, ainsi qu’avoir des effets favorisant la croissance et antioxydants (Wang et al., 2018; Li Yuxin, 2015).
Les Manno-oligosaccharidessont sûrs et non toxiques, avec de bonnes propriétés physico-chimiques telles que la chaleur faible et la stabilité, et aucun effet indésirable lorsqu’il est utilisé en combinaison avec d’autres additifs, et ils ont été largement utilisés comme additifs dans l’alimentation humaine et animale en Chine et à l’étranger (Zhao Xiaofeng, 2008). Dans cet article, nous résumons les méthodes de préparation, les fonctions physiologiques et les progrès de la recherche de l’oligosaccharide de mannan dans l’élevage et la production de volaille, afin de fournir une référence pour l’exploration plus approfondie de son application dans l’élevage et la production de volaille.
1 propriétés physico-chimiques des Oligosaccharides de Mannan
Manno-oligosaccharides Sont une classe d’oligosaccharides, composée de plusieurs molécules de mannose ou de mannose et de glucose reliées principalement par des liaisons glycosidiques α-1,2, des liaisons glycosidiques α-1,3, des liaisons glycosidiques α-1,6, des liaisons glycosidiques β-1,4 ou des liaisons glycosidiques β-1,3 (Ximei Yao, 2011).
Les propriétés physiques et chimiques des oligosaccharides de mannan provenant de différentes sources sont différentes, les oligosaccharides de mannan sont solubles dans l’eau, insolubles dans les solvants organiques, et la coexistence de solvants organiques peut produire la précipitation ou la cristallisation. Manno-oligosaccharides ont une certaine viscosité, et la viscosité est inversement proportionnelle à la température, en outre, lorsque le pH est de 1,5 ~ 3, la viscosité augmente; Lorsque le pH est de 3 ~ 9, la viscosité est plus stable (Chen Xiaoying, 2017). Certains manno-oligosaccharides avec des poids moléculaires allant de 200 à 20 millions ont certains effets de gélation (Yang et al., 2005), et les propriétés structurelles des manno-oligosaccharides sont relativement stables. Les Manno-oligosaccharides sont structurellement stables et contiennent un grand nombre de liaisons chimiques qui ne peuvent être hydrolysées par l’amylase, et existent sous forme d’un mélange de polysaccharides (Y. Liang et al., 2013).
2 Production d’oligosaccharides de Mannan
Actuellement, les principales méthodes de préparation des Oligosaccharides de Mannan Sont: (1) la dégradation, telle que la dégradation enzymatique, la dégradation par acidification oxydative, la dégradation par ultrasons et la dégradation par irradiation, etc.; (2) synthèse, telle que la synthèse à l’état solide à micro-ondes. En raison du coût élevé et de la difficulté technique de la méthode de synthèse, la plupart de la production industrielle de Glyco-oligosaccharides adoptent la méthode de dégradation.
2.1 dégradation
Les Polysaccharides sont autohydrolisés à 190 °C (Carvalheiro et al., 2004) et dépolymérisés par des rayonnements ionisants tels que les rayons C, les micro-ondes et le traitement hydrothermique (Devin et al., 2010; Singh et al., 2009). L’acide faible (H2SO4) hydrolyse les galactomannans des graines de Mimosa pudica en manno-oligosaccharides (Joana et al., 1995); La base forte (NaOH) hydrolyse et dépolymérise les mannans de la paroi cellulaire de la plante, et des manno-oligosaccharides peuvent être produits par une neutralisation plus poussée avec de l’acide fort (HCl) (Mia et al., 1995). La préparation des oligosaccharides de mannan par dégradation est divisée en deux étapes: préparation de mannan et dégradation de mannan. Li Ying et al. (2015) ont utilisé une macération à l’eau chaude pour préparer le mannan à partir de levure de vin, et les conditions optimales d’extraction étaient de 1:23 (g/mL), 124 ℃, 5 h et 3 fois, ce qui a donné un rendement de 14,27% de mannan. La méthode de dégradation du mannan varie en fonction de sa source, Liu Zizheng (2016) a constaté que les conditions de réaction optimales pour la préparation des oligosaccharides de mannan par hydrolyse enzymatique (β-mannanase) étaient les suivantes: température de dégradation de 50 ℃, pH de dégradation de 5,5, temps de réaction de 2 h, rapport de substrat enzymatique de 150 U/g, et le rendement cible des oligosaccharides de mannan de 65,72% en utilisant un test à sens unique et un test orthogonal.
Chen Xiaoying (2017) a déterminé les conditions optimales du procédé pour la préparation de manno-oligosaccharides à partir de levure résiduelle par test orthogonal: concentration enzymatique de la papaïne de 2,25 ‰, temps de digestion enzymatique de 6 h, température alcaline de 45 ℃, temps de digestion alcaline de 5,5 h et concentration alcaline liquide de 0,5 mol/L. Le rendement moyen des manno-oligosaccharides était de 2,14 % et la teneur moyenne était de 40,96 % par des essais pilotes parallèles.
2.2 méthode de synthèse
En utilisant des monosaccharides ou des disaccharides comme substrats, la synthèse à l’état solide à micro-ondes des oligosaccharides a une vitesse de réaction rapide, un rendement de synthèse élevé et aucune pollution. Li Xinming (2008) a constaté que les conditions de réaction optimales pour la synthèse à l’état solide à micro-ondes de mannose Et le glucose comme réactifs étaient les suivants: puissance micro-ondes de 1000 W, temps de traitement micro-ondes de 4 min, 15% additif d’initiateur, 3% additif de catalyseur, et le rendement de synthèse était de 86,50%. Analyse par chromatographie liquide à haute performance (CLHP) des glycooligosaccharides originaux: les monosaccharides représentaient 13,50 %, les disaccharides 3,82 %, les trisaccharides 7,56 %, les tétrasaccharides 6,84 %, les pentasaccharides 4,77 %, les hexasaccharides 5,54 % et les heptasaccharides et plus, 57,97 %.
3 les principales fonctions biologiques des Oligosaccharides de Mannan
3.1 antioxydant
Les amas réactifs d’oxygène (ROS) comme les radicaux libres les plus communs dans l’organisme, y compris l’ion superoxyde (O2-), le radical hydroxyle (-OH), et l’oxygène monoclinique, etc., et trop de radicaux libres peuvent être nocifs pour l’organisme. Le Fe2+ libre intracellulaire réagit avec -OH pour générer des ROS (Xu Wenzhe, 2018), et le dépôt de Fe2+ peut entraîner un stress oxydatif. Les Manno-oligosaccharides ont pour effet de piéger les radicaux libres (He Zhikun et al., 2013). Yang Xueshan et al. (2015) ont constaté que les oligosaccharides de mannan ont de bons effets sur les sels -OH, O2-, diammonium (ABTS + -), les radicaux libres 1,1-diphényl-2-trinitrophénylhydrazine (DPPH) et le Fe2+ chélaté dans les essais in vitro.
Li XM (2008) a constaté que les oligosaccharides de mannan augmentaient la capacité antioxydante totale (T-AOC) des souris en augmentant les activités de la catalase (CAT), de la superoxyde dismutase (SOD), de la glutathion peroxydase (GSH-Px), de Na+-K+-ATPase et de la teneur en glutathion (GSH) dans les expériences animales. Le malondialdéhyde (MDA) est un produit de la peroxydation lipidique, qui est cytotoxique, et la teneur en MDA peut refléter le niveau de peroxydation lipidique et de stress oxydatif (Quan et al., 2014). Guo Yungui et al. (2010) ont montré que les oligosaccharides de mannan pouvaient réduire de façon significative la teneur en MDA dans le sérum, le foie, le myocarde et les muscles des poulets Sanyo. Par conséquent, le mécanisme d’action des oligosaccharides de mannan peut être à travers ses propres propriétés physico-chimiques et la réaction avec les radicaux libres dans les cellules (Zhang Shuai, 2018), qui peuvent récupérer les radicaux libres et jouer une fonction antioxydante; D’autre part, les oligosaccharides de mannan peuvent activer les enzymes antioxydantes dans le corps, augmenter l’activité des enzymes antioxydantes et la teneur en antioxydant, et inhiber la peroxydation des lipides, de manière à maintenir l’équilibre de l’antioxydant dans l’organisme.
3.2 Immunomodulation
Mannan Oligosaccharides Sont des substances antigéniquement actives avec une certaine immunogénicité, qui peuvent induire une réponse immunitaire (Li et al., 2017), et peuvent être utilisés comme adjuvants d’antigènes exogènes pour se lier à la surface cellulaire de certaines toxines, virus et champignons (Kou et al., 2012) afin d’améliorer la réponse immunitaire du corps aux antigènes ou de changer le type de réponse immunitaire, et donc d’améliorer l’immunité cellulaire et humorale de l’organisme animal. Immunité des organismes animaux. En plus de leurs propriétés coagulantes et antigéniques, les mannan-oligosaccharides peuvent réagir avec les récepteurs protéiques à la surface des cellules immunitaires, intervenir dans le système de signalisation sur les cellules de mémoire dans les ganglions lymphatiques et la lamina propria muqueuse pour jouer un rôle immunomodulateur (Chen et al., 2005), et améliorer la fonction de l’immunité anti-infectieuse naturelle par l’activation du système de complément (Xiong A-Ling, 2014).
3.2.1 amélioration de l’immunité non spécifique et spécifique
D’une part, les oligosaccharides de mannan peuvent améliorer la fonction immunitaire non spécifique du corps en augmentant l’index des organes immunitaires et en favorisant l’expression de gènes liés à l’immunité naturelle (Xiong A-Ling, 2014); D’autre part, les oligosaccharides de mannan peuvent favoriser la prolifération des lymphocytes T et B, augmenter le rapport CD4+/CD8+ (Li Xin-Ming, 2008), et stimuler la molécule clé de la voie du signal Toll-like Receptor (TLR) (Duan Ou-Dong, 2013), améliorant ainsi le corps et#39; S fonction immunitaire spécifique. 2013), qui à son tour améliore l’immunité spécifique.
Des études ont montré que l’oligosaccharide de mannan peut augmenter significativement le contenu de l’indice phagocytique, le nombre d’érythrocytes, l’indice thymique et 50%CH50 chez les souris, et améliorer l’immunité non spécifique des animaux (Shen Wenkang et al., 2015). Les Mannooligosaccharides peuvent différencier l’expression des gènes liés à l’immunité naturelle AvBD9, TLR2, TLR4 et Cath-B1 dans les tissus des poulets de chair, et améliorer la fonction de défense immunitaire naturelle des poulets de chair en augmentant l’expression des TLR dans les tissus des poulets de chair et en régulant l’expression des peptides antimicrobiens tels que les p-antioxydants et les cathelicidines à médiation par les TLR (Xiong A-Ling, 2014).
Li Xinming (2008) a montré que les indices d’immunité des tissus ont diminué de façon significative après la modélisation du vieillissement, mais l’oligosaccharide de mannan pourrait augmenter de façon significative les indices du foie, des reins, de la rate et du thymus, ainsi que les niveaux d’immunoglobulines IgA, IgG et IgM dans le sérum des souris vieillissantes; Sous la stimulation de ConA, l’oligosaccharide de mannan pourrait augmenter de manière significative l’indice prolifératif des lymphocytes t du thymus et le taux de transformation des lymphocytes spléiques, augmentant ainsi le niveau d’immunité humorale et cellulaire des souris modèles.
Sous la stimulation de ConA, les oligosaccharides de mannan ont augmenté de manière significative l’indice de prolifération des lymphocytes T du thymus et le taux de conversion des lymphocytes de la rate, ce qui à son tour a augmenté les niveaux d’immunité humorale et cellulaire des souris dans le modèle de vieillissement. En outre, l’oligosaccharide de mannan peut activer les molécules clés de la voie de signalisation TLR et améliorer la sensibilité de la réponse immunitaire dans les tissus jejunaux des porcelets, et d’autre part, il peut améliorer l’immunité intestinale des porcelets en inhibant la suractivation de la voie de signalisation TLR dans les ganglions lymphatiques mésenériques (Duan Xudong, 2013).
3.2.2 Anti-inflammation
L’inflammation est une réponse de défense induite par des agents nuisibles. En général, la réponse inflammatoire est déclenchée par des substances exogènes et des produits de lésion tissulaire et s’accompagne de la production de cytokines pro-inflammatoires, du recrutement et de l’activation des cellules immunitaires et de la production de radicaux libres. Les interleukines (IL) sont des facteurs immunitaires, y compris IL-2, IL-4, IL-10, etc., qui régulent l’inflammation vers le bas, Les interleukines (IL) sont des facteurs immunitaires, y compris l’il-2, l’il-4, l’il-10, etc., qui dérégulent les médiateurs inflammatoires et favorisent les réponses immunitaires (Liang et al., 2012).
Che et al. (2013) ont constaté que les oligosaccharides de mannan augmentaient les taux sériques d’il-10 et le nombre de leucocytes et de lymphocytes, et réduisaient l’intensité de la réponse inflammatoire. Dans un modèle souris de colite aiguë induite par le glucosulfate de sodium (DSS), mannan a normalisé l’expression de la mucine intestinale 2 et a atténué l’expression locale des cytokines pro-inflammatoires IL-1α, IL-1β, IL-6 et de la protéine chimiotactique monocyte (MCP)-1, ainsi que des vésicules inflammatoires des récepteurs TLR4 et NLRP3 de type Toll-like. L’effet protecteur des oligosaccharides de mannan peut être directement medié par les macrophages locaux, et dans un modèle de macrophage murin (RAW264.7) induit par les lipopolysaccharides (LPS), les oligosaccharides de mannan inhibent la production d’il-1α, d’il-1β, d’il-6 et de facteur de stimulation des colons de granulocyte (G-SCF) (Szilamer et al., 2016). On peut voir que l’oligosaccharide de mannan peut favoriser la production de facteurs immunitaires en régulant l’expression de gènes non immunitaires et immunitaires, exerçant ainsi des effets anti-inflammatoires.
Les protéines kinases activées par mitogène (mapk) et le facteur de transcription nucléaire -κB (NF) sont d’importantes voies de signalisation en aval qui régulent les réponses inflammatoires (Kim et al., 2006). Des médiateurs inflammatoires excessifs peuvent activer NF-κB, le faisant se décoller de la protéine inhibitrice -κB (IκB) et entrer dans le noyau pour induire l’expression de gènes médiateurs inflammatoires, exacerbant ainsi la réponse inflammatoire (Joel et al., 2002). En revanche, les protéines ERK, JNK et p38 de la famille MAPKs sont des médiateurs de régulation ciblant NF-κB lors de la régulation de la réponse inflammatoire (Matthew et al., 2014).
Selon Zhou et al. (2015), l’oligosaccharide de mannan a réduit de manière significative la liaison de LPS à la surface cellulaire des cellules 264,7 brutes de macrophages de souris et l’expression du TLR4 induit par les LPS et du groupe de différenciation (CD)14; danshibait significativement les voies stimulantes induites par les LPS des NF-κBs cellulaires 264.7 bruts et des MAPKs, et l’oligosaccharide de mannan inhibait les voies stimulantes des NF-κBs et des MAPKs en bloquant la stimulation des NF-κBs et des MAPKs. Le Mannooligosaccharide réduit l’inflammation induite par les LPS en bloquant l’activation des NF-κB et des MAPKs. De plus, l’oligosaccharide de mannan exerce des fonctions anti-inflammatoires en inhibant l’augmentation induite par la LPS du facteur de nécrose tumorales (TNF)-α et de l’interféron (IFN)-γ (Pourabedin et al., 2016).
3.3 régulation de la microflore et maintien de la santé intestinale
Il a été constaté que les Manno-oligosaccharides ont de bons effets bactériostatiques in vitro (Bozkurt et al., 2016; Brillez longtemps, 2016). Les Manno-oligosaccharides sont efficaces pour inhiber la croissance d’e. coli pathogène en abaissant le pH par la production d’acide lactique par les Lactobacillus (Hang Suqin, 2007). Dans l’adhésion et l’inhibition de l’adhésion entre Salmonella (ou E. coli) et les cellules Caco-2, l’oligosaccharide de mannan a pour effet d’inhibrer l’adhésion de Salmonella et E. coli, et il existe un effet posologie de l’oligosaccharide de mannan sur l’inhibition de Salmonella à la concentration de 0,0005-0,005 mol/L. L’inhibition de l’adhésion est la suivante: α-glycoligosaccharides > β-mannan ≥ mannoglucosaccharides (GL) (GL) (Gao L. 2016; LL). 2016).
En tant que plus grand compartiment immunitaire du corps, l’intestin a pour fonction de prévenir les infections des muqueuses et de réguler la colonisation microbienne (Mehmet et al., 2010). Les Manno-oligosaccharides peuvent augmenter le nombre de bactéries bénéfiques telles que la bifidobactérie et les Lactobacillus (Liu Zizheng, 2016), réduire le nombre de bactéries nocives telles que Escherichia coli (Liu Weidong et al., 2011), et augmenter la diversité des micro-organismes intestinaux (Hang et al., 2012), ce qui améliore la composition de la flore intestinale. Wang Hongshan Et al. (2018) ont constaté que les oligosaccharides de mannan pouvaient moduler sélectivement certains microorganismes et augmenter considérablement l’abondance relative des probiotiques tels que Eckermannia, Lactobacillus et Bifidobacterium. En outre, les oligosaccharides de mannan peuvent réparer les dommages intestinaux et maintenir la santé intestinale.
Yuxin Li (2015) a constaté que, dans le test d’intoxication à E. coli, l’oligosaccharide de mannan a réduit l’expression d’arnm de TLR4 et d’il-1β dans la muqueuse intestinale sans empoisonnement, et a augmenté le nombre de lymphocytes interépithéliaux et de cellules en cupures après l’intoxication à E. coli, et que l’oligosaccharide de mannan a amélioré la réponse immunitaire locale en régulant l’expression des gènes des cytokines intestinales dans la muqueuse intestinale et en modifiant le nombre de cellules immunitaires intestinales, Maintenant ainsi la santé de l’intestin. Cela aidera à maintenir la santé du tractus intestinal. Les jonctions serrées sont le principal lien entre les cellules épithéliales de la muqueuse intestinale et jouent un rôle important dans le maintien de l’intégrité de la structure mécanique et le fonctionnement normal de la barrière muqueuse intestinale (Ting Chen, 2016). Les trois protéines de jonction serrée les plus importantes sont la ZO-1, l’occludine et les claudines (Zhang et al., 2015). Wu Shi (2017) a constaté que les oligosaccharides de mannan ont certaines fonctions de réparation sur les cellules épithéliales de l’intestinal, par rapport au groupe lésé par les LBP, les oligosaccharides de mannan ont provoqué une augmentation significative de l’activité cellulaire Caco-2, une baisse significative de l’expression de l’arnm IL -6, TNF -α, IL -1β, une augmentation significative de l’expression de l’arnm Claudin-1, ZO-1, et MUC-2, et une augmentation de l’expression de la protéine ZO-1 cela suggère que mannan peut corriger les dommages cellulaires Caco-2 induits par les LBP.
3.4 régulation du métabolisme des glycolipides
Il a été démontré que les Manno-oligosaccharides régulent le métabolisme du glucose et des lipides. Dans un modèle de souris riche en matières grasses (HFD), l’oligosaccharide de mannan a réduit les taux de triglycérides (TG) dans le foie et le sérum, et a augmenté de façon significative la TG fécale et la teneur en matières grasses excrétées (Izumi et al., 2006). Dans un modèle de souris diabétique fabriqué par injection intrapéritonéale de tétracycline, Qiyu Gao et al. (2012) ont constaté que les oligosaccharides de mannan réduisaient significativement les taux de TG, de glucose sanguin et de cholestérol (CHO) chez les souris, et augmentaient significativement les taux de lipoprotéines de haute densité (HDL) de cholestérol (HDL-C), et que des doses élevées d’oligosaccharides de mannan avaient un meilleur effet sur la réduction des glycolipides que de faibles doses. L’acide acétique, l’acide propionique et l’acide butyrique sont les principaux acides gras à chaîne courte dans l’intestin. Les acides acétique, propionique et butyrique contrôlent le poids corporel en régulant l’apport et la dépense d’énergie chez l’hôte (Dinesh et al., 2017) et aident à réduire la prise de poids causée par les régimes riches en matières grasses (Den et al., 2015).
Wang Hongshan et al. (2018) ont constaté que l’oligosaccharide de mannan peut augmenter de manière significative la teneur en acide acétique, acide propionique et acide butyrique dans le cecum de souris sur des régimes normaux et riches en matières grasses, ralentissant efficacement le gain de poids causé par les régimes riches en matières grasses, et améliorant la capacité du métabolisme des lipides de la flore intestinale des souris. Silvia et al. (2015) ont trouvé que les oligosaccharides de mannan peuvent induire le corps à conserver de préférence les acides gras polyinsaturés à longue chaîne (agp-lc-) et à réduire le niveau d’acides gras en tant que substrats de β-oxydation, modifiant ainsi la composition en acides gras du foie et des muscles, ce qui est lié à la réduction de l’expression du gène de la désaturase dans le foie. De plus, les oligosaccharides de mannan favorisent l’accumulation des agp-lc-puf et l’oxydation β-en affectant les paramètres liés aux tissus lymphoïdes associés à l’intestin et en régulant le métabolisme des lipides dans les muscles et le foie.
La leptine, une protéine produite principalement par les adipocytes, peut réguler l’équilibre énergétique en supprimant la famine. Wang et al. (2018) ont constaté que le niveau de transcription du gène leptine était significativement élevé chez les souris HFD, tandis que l’ajout d’oligosaccharides de mannan a entraîné une diminution significative du niveau de transcription du gène leptine, ce qui a inhibé le gain de poids corporel et l’accumulation adipose chez les souris HFD; En outre, les oligosaccharides de mannan pourraient réduire le niveau de transcription du gène de la lipocaline pour soulager la résistance à l’insuline et l’intolérance au glucose induite par la HFD chez les souris HFD. En outre, mannan oligosaccharide peut réduire la résistance à l’insuline et l’intolérance au glucose induite par les souris HFD en abaissant le niveau de transcription du gène de la lipocaline.
4 Mannan Oligosaccharide dans l’élevage et l’industrie de la volaille
4.1 Application dans la Production porcine
Dans la production porcine, il a été démontré que les oligosaccharides de mannan favorisent la croissance, améliorent la rémunération des aliments, améliorent l’immunité animale, augmentent le pouvoir antimicrobien et améliorent la qualité de la viande (Porntrakulpipa et al., 2016; Su et al., 2016). Zhao et al. (2012) ont constaté que l’ajout de 0,1% d’oligosaccharides de mannan augmentait non seulement de façon significative la performance de croissance des porcelets sevrés, mais aussi de manière significative la digestibilité de la matière sèche et de l’azote, et réduisait de façon significative le taux de diarrhée des porcelets. On a constaté que l’ajout de 0,1% d’oligosaccharide de mannan améliore significativement la performance de croissance des porcelets sevrés, augmente également significativement la digestibilité de la matière sèche et de l’azote, et réduit significativement le taux de diarrhée. En outre, il a été signalé que l’oligosaccharide de mannan n’améliorait pas la performance de croissance des animaux (Hrvoje et al., 2016).
L’anticorps neutralisant est un anticorps produit par le corps stimulé par l’antigène de surface viral avec une fonction d’adsorption et de pénétration. Porntrakulpipat et al. (2016) ont montré que 400 PPM de manno-oligosaccharides pourraient efficacement améliorer les anticorps PRRS spécifiques, mais pas les anticorps neutralisants, tandis que 800 PPM de manno-oligosaccharides pourraient considérablement améliorer les anticorps neutralisants. On peut constater que l’ajout de glycooligosaccharides dans l’alimentation des truies peut contribuer à renforcer l’effet de la vaccination PRRS chez les truies. En résumé, les rapports sur l’effet de promotion de la croissance de l’oligosaccharide de mannan tendent à être positifs, mais son mécanisme d’action doit être examiné plus en détail. Au cours des dernières années, les rapports de recherche sur l’oligosaccharide de mannan chez les porcs au pays et à l’étranger sont présentés dans le tableau 1.
Tableau 1 principales études et applications des glycoligosaccharides dans la production porcine
Additions Manno-oligosaccharides | Phase d’essai et durée | Résultats des tests références | ||
0,1% du pib | Porcelets sevrés (21 jours), période d’essai 28 jours | Les effets de promotion de la croissance ont été importants pour les ADG et les ADFI Taux d’élimination de la matière sèche apparente et de l’azote significativement plus élevés; Taux de diarrhée significativement plus bas Zhao et al (2012) | ||
0,2 % | Porcelets sevrés (21 jours), période d’essai 28 jours | Réduction significative du taux de diarrhée chez les porcelets et augmentation significative du taux de diarrhée chez les porcelets. ADG, et les oligosaccharides Ala ~ Gln et mannan n’ont pas interagi dans la performance de croissance élevée de Tee Ping et al. (2017) | ||
0,2 % | Porcelets sevrés (30 jours), période d’essai 28 jours | ADG significativement plus élevé et G:F plus bas; ADG significativement plus élevé et G:F plus bas; ADG significativement plus élevé et G inférieur :F. Réduction des niveaux sériques de protéines totales, d’azote uréique et de cholestérol total Chun-zao Wu et al. 2011; Propriétés antioxydantes significativement améliorées | ||
0,2 % | Porcelets sevrés (28 jours), période d’essai 35 jours | Augmentation significative de l’activité des pvvih chez les neutrophiles Le sexe; Lymphocytes T CD4+ et CD8+ Valpoti et al. (2018) Ratio significativement plus élevé et performance immunitaire améliorée | ||
0,1% du pib | Porcelets pesant environ 8 kg, période d’essai 28 jours | Augmentation du nombre de bifidobactéries. | , mais favorise la croissance Su et al. (2016) | |
0,3 % % | Porcelets pesant environ 12 kg, période d’essai 42 jours | Augmentation significative du poids corporel final et de l’adg, et a eu un effet important de promotion de la croissance. 0,2% glyco-oligosaccharides peut augmenter le poids à la naissance des porcelets et raccourcir l’intervalle Entre l’oestrus des truies, et augmenter le nombre de truies dans l’oestrus. | Poeikhampha et al. (2011) | |
0,1%, 0,2%, 0,4% | Truies, période d’essai dès la gestation 85 d au sevrage | pour Poids de sevrage des porcelets et gain de poids quotidien des porcelets pendant la lactation, des doses de 0,1%, 0,2% et 0,4% de manno-oligosaccharides ont augmenté significativement la teneur en IgG dans le sérum de mise bas et le colostrum des truies. | Li, Yuxin (2015) | |
0,04 % | Truies, période d’essai dès la gestation 86 d au sevrage | Raccourcissement significatif de l’interpériode entre le sevrage et l’oestrus chez les truies et augmentation significative du poids de sevrage des porcelets et du gain quotidien des porcelets pendant la lactation. |
Duan et al. (2016) |
4.2 Application chez la volaille
Dans la production de poulets à griller, les oligosaccharides de mannan peuvent favoriser l’expression de gènes étroitement liés à la santé intestinale, tels que LUM, LYZ et APOA1, et ainsi réguler les réponses immunitaires intestinales et protéger les animaux de la toxicité des bactéries causant des maladies intestinales pour maintenir la santé intestinale chez les poulets à griller (Xiao et al., 2012). Wuwei et al. (2017) ont constaté que 50 et 75 mg/kg d’oligosaccharides de mannan pouvaient augmenter significativement le poids corporel et la consommation d’aliments des poulets de chair, dans lesquels 50 mg/kg d’oligosaccharides de mannan amélioraient significativement la rémunération alimentaire; Les oligosaccharides du mannan pourraient également augmenter de manière significative l’activité du chat, du gazon, de la GSH-Px et de la T-AOC, et la quantité appropriée d’oligosaccharides du mannan était de 50 mg/kg.
Song Xinlei et al. (2018) ont constaté que l’oligosaccharide de mannan peut augmenter considérablement les niveaux d’iga et d’il-2 dans le sang des poulets de chair, ce qui peut améliorer l’immunité du corps. De plus, les oligosaccharides de mannan ont pour effet d’atténuer le stress thermique chez les poulets de chair (Sohail et al., 2010). Dans des études sur les œufs, Zaghini et al. (2005) ont montré que l’oligosaccharide de mannan a la capacité d’adsorber et de dégrader l’aflatoxine B1 (AFB1), ce qui peut réduire l’absorption de l’afb1 dans le tractus gastro-intestinal.
Bozkurt et al. (2016) ont constaté que l’ajout d’oligosaccharides de mannose au régime alimentaire des poules pondeuses peut améliorer considérablement leur production d’œufs, leur poids d’œufs et leur compensation alimentaire, augmenter la capacité antioxydante et réduire le nombre de bactéries pathogènes dans la partie postérieures du cecum. Et réduit le nombre de bactéries pathogènes dans le segment postérieur du cécum. En conclusion, l’ajout d’une quantité appropriée de Glyco-oligosaccharides dans l’alimentation de la volaille a de nombreuses fonctions physiologiques telles que l’amélioration des performances de croissance, l’amélioration de l’immunité et la capacité antioxydante, mais le mécanisme des Glyco-oligosaccharides doit être étudié en profondeur. Cependant, le mécanisme d’action des glyco-oligosaccharides doit être étudié en profondeur. Les rapports de recherche sur les glyco-oligosaccharides chez la volaille au cours des dernières années sont présentés au tableau 2.
Tableau 2 principales études et applications des glycoligosaccharides dans la production de volaille
Additions Manno-oligosaccharides | Espèces de volailles et durée des tests résultats des tests | bibliographie | |
0,1% du pib | In Les poulets de chair d’un jour, la consommation de nourriture et le gta ont été considérablement augmentés. Période d’essai 42 d Fruit meilleur que la chrysomycine | Jane Yunhua et al. (2016) | |
0,1% du pib | Les Mannitoligosaccharides ont considérablement augmenté la saveur de la viande dans des conditions de stress thermique. Performance de croissance et activité GSH-px dans le muscle du sein des poussins AA d’un jour. Le conseil des ministres Période d’essai a été 42 jours. Significativement réduit la concentration sérique de corticosterone, MDA Concentration et 48 h de perte par goutte à goutte |
Cheng et al. (2018) | |
0,1% du pib | Poules pondeuses de 36 semaines période d’essai 15 semaines | Augmentation significative du poids des coquilles d’œuf; Diminution significative du poids relatif des jaunes d’œufs en blanc; Diminution significative de la hauteur du blanc d’œuf et des unités haf | Bozkurt et al. (2012) |
0,1% du pib | Poules pondeuses de 82 semaines période d’essai 25 semaines | Augmentation significative du poids des œufs, de la production d’œufs et amélioration du coût des aliments pour animaux; Augmentation significative de la capacité antioxydante du foie et inhibée la croissance des bactéries pathogènes du cecum. | Bozkurt et al. (2016) |
0,05%, 0,1%, 0,15% |
Poules pondeuses de 55 semaines période d’essai 11 semaines | Les oligosaccharides de mannan à 0,1% et 0,15% ont considérablement augmenté le taux de production d’œufs et le poids des œufs, et amélioré la rémunération des aliments; L’ajout d’oligosaccharides de mannan a réduit significativement le nombre de salmonelles et augmenté le nombre de lactobacilles; Les oligosaccharides de mannan augmentaient la digestibilité de la DM et de la pc, et la digestibilité était la plus élevée dans le groupe avec 0,05 % des oligosaccharides de mannan. |
Jahanian et al. (2015) |
4.3 Application chez les Ruminants
Les Manno-oligosaccharides ont été moins étudiés chez les ruminants. Xiao Yu (2012) a constaté que les oligosaccharides de mannan pouvaient réduire significativement le pH du rumen de chèvre, réduire significativement l’activité sérique MDA et ALT, augmenter significativement la globuline sérique et la teneur sérique en phosphore, augmenter significativement les IgA sériques à 21 jours, et les IgM sériques à 7 et 14 jours. Les oligosaccharides de mannan ont eu pour effet d’améliorer les paramètres de fermentation du rumen de chèvre et d’améliorer le système immunitaire. Xie Xinming et al. (2018) ont constaté que l’oligosaccharide de mannan améliorait les performances de croissance et l’immunité chez les moutons mongols.
Les Manno-oligosaccharides peuvent augmenter le taux d’adg et la compensation alimentaire des veaux, augmenter le contenu sérique d’immunoglobulines et le nombre de bifidobactéries dans les selles, et diminuer le nombre d’e. coli dans les selles (Jin Yadong et al., 2016). Guo Tingting et al. (2017) ont rapporté que les mannan-oligosaccharides augmentaient significativement la teneur totale en acides volatils et en azote ammoniacal dans le rumen des vaches laitières, dont la teneur en acide acétique dans le liquide du rumen était significativement plus élevée; Le pourcentage de matières grasses dans le lait était significativement plus élevé et le nombre de cellules somatiques dans le lait était plus faible. Westland et al. (2017) ont constaté que les mannan-oligosaccharides augmentaient significativement le poids du colostrum des vaches avec pour effet d’améliorer les performances de croissance.
5 Conclusion
En tant que nouveau type d’additif alimentaire, mannan-oligosaccharides ont été largement utilisés dans l’industrie des aliments pour animaux. Cependant, il y a encore des problèmes non résolus dans le processus d’application, qui limitent sa vulgarisation et son application dans l’industrie aquacole. À l’avenir, nous devrions augmenter la recherche sur le mécanisme des oligosaccharides de mannan dans le corps animal, la façon d’ajouter des oligosaccharides de mannan à différents stades de l’animal et sa quantité appropriée, l’effet de la combinaison des oligosaccharides de mannan avec d’autres additifs alimentaires, et les interactions entre les oligosaccharides de mannan et la flore intestinale de l’animal, et ainsi de suite. Avec l’approfondissement de la recherche et la clarification du mécanisme d’action associé, les mannan-oligosaccharides seront plus rationnellement et largement utilisés, et sa valeur d’application sera utilisée dans une plus grande mesure.
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